Kaedah Untuk Menjana Dan Menilai Model Ikan Zebra Penyakit Buah Pinggang Manusia Bahagian 2

Analisis histologi

Mutan mungkin tidak selalu menunjukkan perubahan morfologi yang cukup bermaklumat. Analisis histologi bagi embrio atau organ orang dewasa ini mungkin diperlukan untuk menentukan perbezaan antara haiwan jenis mutan dan liar. Kaedah analisis histologi untuk kedua-dua larva dan ikan zebra dewasa adalah mantap dan boleh dilakukan dengan cara pemprosesan yang tinggi (Sabaliauskas et al., 2006). Embrio ikan zebra atau tisu dewasa boleh dibenamkan dalam parafin atau resin JB-4 diikuti dengan pembahagian mikrotom untuk mengkaji seni bina tisu (Sullivan-Brown et al., 2011; Copper et al., 2018). Cryo-sectioning juga boleh dilakukan dengan embrio ikan zebra (Ferguson dan Shive, 2019). Bahagian tisu ini kemudiannya digunakan untuk pewarnaan imunofluoresensi, kajian imunohistokimia, atau pewarnaan H&E. Pewarnaan H&E bahagian buah pinggang dewasa menunjukkan bahawa bahagian apikal tubul proksimal diwarnakan merah jambu gelap dan mempunyai lumen yang luas, manakala tubul distal mempunyai kesan merah jambu muda dengan lumen sempit, dengan itu menandakan dengan jelas corak pewarnaan perbezaan antara segmen ( McCampbell et al., 2015). Teknik pewarnaan asid-Schiff (PAS) berkala yang mengesan polisakarida dalam tisu mempunyai pertalian untuk epitelium sempadan berus tubul proksimal (McCampbell et al., 2015; McKee dan Wingert, 2015). Perak methenamine mengotorkan membran bawah tanah dan boleh digunakan untuk tubul nefrik dan pewarnaan membran bawah tanah glomeruli (McCampbell et al., 2015). Model AKI ikan zebra oleh penghinaan gentamicin menunjukkan perataan epitelium, kehilangan sempadan berus apikal, distensi tiub, dan pengumpulan serpihan dalam lumen, dengan itu menonjolkan kegunaan histologi dalam menganalisis model penyakit ikan zebra (Cianciolo Cosentino et al., 2013). .

Dalam beberapa tahun kebelakangan ini, penyelidikan mengenai penggunaan sel stem dan ubat herba Cina untuk rawatan penyakit buah pinggang telah mendapat perhatian yang besar. Mekanisme utama kedua-dua terapi adalah untuk menggalakkan pembaikan tisu buah pinggang yang cedera dan melindungibaki fungsi buah pinggang.

Ubat herba Cina, cistanche, telah digunakan dalam perubatan tradisional Cina untuk merawat pelbagaipenyakit buah pinggang kroniksejak zaman dahulu lagi. Dilaporkan bahawa cistanche mempunyai potensi untuk mengurangkan keradangan,mengurangkan fibrosis buah pinggang, dan menggalakkan sintesis komponen matriks ekstraselular. Telah didedahkan bahawa kesan ini disebabkan oleh komponen bioaktifnya, termasuk banyak bahan fenolik, triterpenoid, dan kumarin.

Sebaliknya, teknologi sel stem telah menyebabkan revolusi dalam amalan perubatan. Penyelidikan telah menunjukkan bahawa sel stem boleh membezakan kepada pelbagai jenis sel buah pinggang dan melakukan aktiviti terapeutik, termasuk melindungi tisu buah pinggang berfungsi yang tinggal, melambatkan fibrosis tisu, dan membaiki kerosakan.tisu buah pinggang.

Klik pada Cara Mengambil Cistanche

Untuk maklumat lanjut:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Akhirnya, gabungan perubatan tradisional Cina dengan sains moden boleh menjadi kunci untuk merawat pelbagaipenyakit buah pinggang. Strategi ini secara beransur-ansur telah diterima oleh komuniti perubatan dan kajian telah menunjukkan bahawa terapi gabungancistanchedan rawatan sel stem boleh mengurangkan kadar kematian penyakit buah pinggang dengan ketara.

Kesimpulannya, penggunaancistanchedan rawatan sel stem dalam rawatan penyakit buah pinggang menunjukkan potensi yang besar dan memerlukan kajian lanjut. Terapi gabungan kedua-dua rawatan boleh memberikan pilihan rawatan yang lebih baik untuk mereka yang menghadapi penyakit buah pinggang.

Pengenalpastian kecacatan segmentasi pronephros

Pronephros dicorak ke dalam segmen berbeza yang melaksanakan fungsi yang berbeza. Mekanisme di sebalik segmentasi ini tidak difahami dengan jelas, walaupun banyak faktor transkripsi telah dikenal pasti sebagai pengawal selia segmentasi. Perbezaan dalam corak segmental boleh dikenal pasti dengan mudah melalui analisis WISH dengan riboprobes yang secara khusus menandakan segmen pronephros yang berbeza. Kedudukan tepat segmen pronephros boleh ditandakan dengan melaksanakan penghibridan in situ berganda bagi penanda khusus segmen dan riboprobe antisense yang menandakan somit (seperti smyhc1 dan xirp2a). Penanda khusus segmen yang paling biasa ialah slc20a1a untuk PCT, trpm7 untuk PST, slc12a1 untuk DE, stc1 untuk CS dan slc12a3 untuk DL (Rajah 2). Mutasi dalam HNF1b manusia dikaitkan dengan keabnormalan buah pinggang seperti displasia buah pinggang, buah pinggang glomerulocycstic, oligomeganephronia dan buah pinggang berfungsi bersendirian (Lindner, 1999; Bingham et al., 2002; Bohn et al., 2003). Naylor et al., (2013) menganalisis segmentasi pronephros oleh WISH dalam embrio ikan zebra knock-out hnf1b menggunakan gen penanda khusus segmen dan mendapati bahawa penanda tubul proksimal dan distal tidak terdapat dalam mutan. Menggunakan eksperimen yang sama, didapati bahawa faktor transkripsi spirakel kosong homeobox gen 1 (emx1) menggalakkan nasib lewat distal dan menghalang nasib awal distal semasa nefrogenesis (Morales et al., 2018). Wingert et al., (2007) menjalankan analisis WISH terhadap embrio yang dirawat RA dan DEAB dan mendapati bahawa rawatan DEAB mengakibatkan kehilangan segmen proksimal dan pengembangan segmen distal, manakala rawatan RA eksogen membalikkan fenotip ini. Mereka juga mewujudkan hubungan antara faktor transkripsi caudal (cdx) dan RA dalam mengawal kedudukan dan segmentasi nefron (Wingert et al., 2007). Kami telah menunjukkan bahawa domain EF-tangan yang mengandungi 2 (efhc2) knockdown mengakibatkan pengembangan segmen awal distal dan pengurangan dalam CS dan segmen lewat distal. Ekspresi odf3, yang menandakan sel multi-ciliated tubulus pronephric, juga dikurangkan dalam morfan efhc2 (Barrodia et al., 2018).

Pewarnaan dan pengimejan silia pronephric

Silia adalah organel berasaskan mikrotubulus yang sama ada motil atau tidak motil. Gangguan manusia yang disebabkan oleh kecacatan pada struktur dan fungsi silia dipanggil ciliopathies. Kecacatan pada silia yang terdapat dalam pronephros ikan zebra selalunya membawa kepada keriting badan, pembentukan sista, dan pelebaran tubul (Sullivan-Brown et al., 2008). Sel multiciliated yang terdapat dalam pronephros zebrafish boleh divisualisasikan dengan WISH atau pendarfluor in situ hibridisasi (FISH) menggunakan antisense odf3b atau rfx2 riboprobes (Liu et al., 2007; Barrodia et al., 2018). Silia dalam embrio ikan zebra boleh diwarnakan menggunakan tubulin berasetilasi dan g-tubulin boleh digunakan untuk menandakan badan basal (Jaffe et al., 2010; Zaghloul dan Katsanis 2011). Pergerakan silia motil boleh dirakam menggunakan mikroskop dengan kamera berkelajuan tinggi dengan menggunakan ikan zebra transgenik seperti Tg(Foxj1a: GFP) (Tavares et al., 2017). Teknik gabungan IKAN dan ujian pendarfluor imun telah dibangunkan untuk menandakan sel multiciliated, silia, dan badan basal (Marra et al., 2017). Mutan ikan zebra yang berbeza dengan kecacatan silia seperti Locke, swt, dan kerinting telah diperiksa secara terperinci dan didapati ia menunjukkan pelbagai kecacatan pergerakan silia (Sullivan-Brown et al., 2008). Pergerakan silia dikurangkan dalam mutan Locke dan silia tidak bergerak dalam swt, manakala pergerakan silia dalam kerinting berjulat daripada anjakan tidak bergerak hingga tidak teratur. Imunostaining dengan tubulin a-asetilasi menunjukkan bahawa panjang silia adalah normal dalam swt dan kerinting manakala locke memaparkan silia yang lebih pendek (Sullivan-Brown et al., 2008). Kaedah yang diterangkan di sini telah digunakan secara meluas untuk mengenal pasti kecacatan silia dalam penyakit buah pinggang yang melibatkan silia.

Penilaian fungsi glomerulus

Fungsi utama buah pinggang adalah untuk menapis darah dan membuang bahan buangan dan cecair berlebihan dari badan sambil menghalang kehilangan makromolekul dalam air kencing. Glomerulus boleh menapis molekul 5 kDa tetapi tidak membenarkan perkumuhan molekul yang lebih besar seperti albumin serum (Chang et al., 1976). Kaedah diagnostik yang biasa digunakan untuk menilai disfungsi buah pinggang pada manusia tidak boleh digunakan untuk ikan zebra kerana saiznya yang kecil. Walau bagaimanapun, pewarna pendarfluor dengan berat molekul berbeza yang meniru molekul yang biasa ditemui oleh buah pinggang manusia boleh disuntik ke dalam ikan zebra, dan penilaian pelepasan atau pengekalannya boleh digunakan sebagai pengganti untuk menentukan fungsi buah pinggang (Christou-Savina et al., 2015). ). Telah terbukti bahawa suntikan dextran pendarfluor 10 kDa ke dalam rongga perikardium embrio ikan zebra mengakibatkan kehilangan kira-kira 85 peratus pewarna melalui rembesan dari buah pinggang dalam tempoh 24 jam selepas suntikan (HPI) (Christou-Savina et al. , 2015). Pewarna dengan berat molekul yang lebih tinggi seperti 70 kDa atau ke atas memerlukan suntikan ke dalam vaskular dan dikekalkan dalam embrio jenis liar. Walau bagaimanapun, 70 kDa dextran boleh dikesan dalam dinding tubul proksimal apabila disuntik ke dalam vasculature cystinosis (ctn's) mutant zebrafish, menunjukkan bahawa integriti celah penapis glomerulus terjejas dalam sen-/- larva (Elmonem et al., 2017). . Kramer-Zucker et al., (2005) menyuntik 500 kDa FITC-dextran ke dalam vena kardinal 84 hpf jenis liar dan embrio ikan zebra morfan nefrin dan podocin, dan mengesan pewarna dalam pronephros yang menunjukkan disfungsi nefron dalam morfan ini.

Penilaian penyerapan semula metabolit

Reseptor endocytic transmembrane megalin/LRP2, penyesuainya dilumpuhkan2 (dab2), dan coreceptor Dublin memainkan peranan utama dalam pembersihan metabolit pengantara endositosis daripada turasan glomerular (Anzenberger, 2006). Suntikan dextran berlabel pendarfluor atau protein berkaitan reseptor (RAP) berlabel pendarfluor 70 kDa, protein yang dikaitkan secara fizikal dengan megalin/LRP2 dalam aliran darah embrio ikan zebra, membawa kepada pengambilan molekul ini untuk penyerapan semula. Ini berfungsi sebagai kaedah mudah untuk menilai fungsi penyerapan semula metabolit buah pinggang. Dalam persetujuan dengan peranan utama mereka dalam penyerapan semula metabolit, kejatuhan sama ada megalin / LRP2 atau dab2 membawa kepada kegagalan sepenuhnya pengambilan endositik pengantara reseptor pengesan dalam morfan (Anzenberger, 2006).

Penilaian pelebaran tubul

Tubul pronephric dilapisi oleh satu lapisan sel epitelium terpolarisasi. Morfologi tubul pronephric dan tepukannya yang bertukar menjadi segmen yang berbeza dikawal oleh percambahan sel epitelium yang berbeza berhampiran hujung distal dan penghijrahannya ke arah glomerulus. Peristiwa ini seterusnya dikawal oleh bendalir yang mengalir dalam pronephros, dengan itu memberikan korelasi antara morfologi organ dan fungsi (Vasilyev et al., 2009). Sel-sel di hujung proksimal adalah berbelit-belit dan lebih kolumnar, manakala sel-sel di hujung distal adalah kuboid (Vasilyev et al., 2009). Penurunan dalam kadar penapisan glomerular, halangan dalam tubul, atau kecacatan dalam perkembangan silia dan motilitas menghalang penghijrahan sel kolektif ini dari arah posterior ke anterior. Walau bagaimanapun, sel-sel di hujung distal terus membiak, menyebabkan pelebaran tubul pronephric (Naylor dan Davidson, 2017). Pelebaran tubul boleh dinilai sama ada dengan memerhatikan keseluruhan embrio secara langsung di bawah mikroskop atau melalui analisis histologi. Optik DIC boleh digunakan untuk imej dan mengira diameter tubul pronephric embrio ikan zebra. Sullivan-Brown et al., (2008) membandingkan pelebaran tubul dalam mutan jenis liar dan kerinting yang mempunyai kecacatan pada silia dan mendapati bahawa dalam jenis liar tubul medial mempunyai diameter yang lebih besar berbanding dengan tubul posterior dan diameter tubul medial menurun dari semasa ke semasa. Dalam mutan kerinting, diameter tubul medial dan posterior adalah serupa dengan jenis liar pada 26-30 hpf, tetapi peningkatan berterusan dalam diameter tubul medial diperhatikan dalam mutan ini pada 48 hpf dan seterusnya. Selanjutnya diperhatikan bahawa bilangan sel yang mengelilingi tubul medial juga meningkat dalam embrio mutan (Sullivan-Brown et al., 2008). Mutasi dalam gen MNX1 manusia (motor neuron dan pankreas homeobox 1) menyebabkan sindrom Currarino, penyakit kongenital yang jarang berlaku yang dicirikan oleh agenesis sakral dan keabnormalan urogenital dan buah pinggang seperti buah pinggang ladam, buah pinggang tunggal, hidronefrosis, dan stenosis anorektal (Currarino et al., 1981; Lee et al., 2018; Dworschak et al., 2021). Ott et al., (2016) menjana morfan mnx2b dalam latar belakang Tg(-8cldnb.1:lynEGFP)zf106 kepada sel epitelium imej dalam membangun pronephros dan mendapati bahawa morfan menunjukkan diameter tubul proksimal yang diperbesarkan berbanding dengan liar. -jenis kawalan pada 4 pdf. Analisis lanjut mendedahkan bahawa morfan ini telah mengubah fungsi buah pinggang, silia pronephric yang tidak teratur, dan mikrovili apikal yang cacat (Ott et al., 2016). Analisis sedemikian menggunakan ikan zebra sudah pasti akan membantu kita memahami mekanisme asas penyakit manusia.

Penilaian kekutuban sel epitelium

Kekutuban sel epitelium tubul pronephric dikekalkan oleh kompleks protein yang mengasingkan membran selular ke dalam domain apikal dan basolateral dan mengatur subdomain membran untuk fungsi tertentu seperti rembesan, penapisan, penyerapan, dan rangsangan deria (Pieczynski dan Margolis, 2011). Dislokasi beberapa reseptor, pengangkut, dan saluran telah dikenal pasti dalam banyak keadaan penyakit seperti Na plus K plus -ATPase, Na plus K plus 2Cl− cotransporter, dan EGFR dalam PKD dan H plus -ATPase dalam penyakit Dent (Wilson, 2011) . Kekutuban sel epitelium boleh diperiksa dengan pewarnaan imunofluoresensi seluruh embrio menggunakan antibodi terhadap Na plus /K plus -ATPase, penanda simpang ketat ZO-1, atau alkali fosfatase (AP) untuk mengenal pasti kecacatan dalam polarisasi epithelia tubul dalam mutan berbanding dengan embrio jenis liar. Na plus /K plus -ATPase ialah salah satu protein yang paling banyak dalam sel epitelium tiub yang mengekalkan homeostasis natrium-kalium dan mengawal fungsi pengangkut lain yang terdapat dalam sel epitelium (Fernández dan Malnic, 1998). Ia disetempatkan ke membran plasma basolateral dan penting untuk polarisasi sel epitelium dan pembentukan dan penyelenggaraan persimpangan ketat (Rajasekaran et al., 2001). ZO-1 dan AP digunakan untuk menandakan permukaan apikal sel epitelium pronephric. Drummond et al., (1998) menganalisis sekumpulan mutan yang mempunyai kecacatan ringan hingga teruk pada pronephros. Mereka memeriksa kekutuban sel epitelium dalam 2.5 pdf embrio dengan pewarnaan imunofluoresensi dengan anti-Na plus /K plus -ATPase alpha subunit monoklonal antibodi (a6F) diikuti dengan pembahagian tisu. Analisis ini menunjukkan bahawa penyetempatan Na plus /K plus -ATPase telah diubah dalam kebanyakan garisan mutan berbanding dengan ekspresi basolateral biasa. Dalam mutan gelembung berganda (bb) dan fleer (flr), Na plus / K tambah -ATPase dinyatakan dalam permukaan apikal manakala permukaan basolateral menunjukkan pewarnaan yang berkurangan. Mutan lain mempunyai lebih banyak pewarnaan sisi, dengan permukaan apikal dan basolateral yang tidak ternoda (Drumond et al., 1998).

Pengesanan batu karang

Batu ginjal adalah kristal garam termendap, antaranya batu kalsium adalah yang paling biasa (Evan, 2010). Ini terdiri daripada kalsium oksalat (CaOx) dan kalsium fosfat (CaP) dalam nisbah yang berbeza. Batu kalsium boleh dijangkakan dalam mutan ikan zebra yang telah mengubah homeostasis kalsium. Pewarna penting seperti Alizarin merah (pendarfluor merah) dan Calcein (pendarfluor hijau) boleh digunakan untuk mengesan tisu yang mengandungi kalsium dan batu karang dalam larva ikan zebra. Elizondo et al., (2010) menunjukkan bahawa 57 - 97 peratus daripada embrio mutan homozigot trpm7 menghasilkan batu karang pada 5 dpf, manakala hanya 0-1.4 peratus daripada adik beradik jenis liar membangunkan batu tersebut. Pengimejan embrio mutan homozigot trpm7 berwarna merah alizarin pada titik masa yang berbeza menunjukkan bahawa 2-4 embrio dpf tidak mempunyai batu, dan batu itu diperhatikan pada 5 dpf dalam lumen dan bukan dalam epitelium tubul pronephric (Elizondo et al ., 2010).

Kesimpulan dan prospek

Insiden penyakit buah pinggang meningkat pada kadar yang membimbangkan di seluruh dunia. Terdapat keperluan mendesak untuk mengenal pasti punca penyakit ini dan membangunkan kaedah baru untuk diagnosis dan penawarnya. Buah pinggang metanephric mamalia adalah kompleks, menjadikannya sukar untuk memahami patologi penyakit buah pinggang. Pronephros dalam larva ikan zebra berfungsi dan hanya mempunyai dua nefron pada kedua-dua belah notochord dengan glomerulus berkongsi di bahagian depan dan kloaka di hujung posterior. Dalam ulasan ini, kami telah membincangkan pelbagai kaedah yang boleh digunakan untuk menjana model ikan zebra penyakit buah pinggang manusia dan cara menganalisis fenotip model penyakit ini pada peringkat morfologi, selular dan molekul. Penyelidikan yang teliti oleh banyak kumpulan telah mewujudkan kaedah penjanaan dan analisis model penyakit ini selama bertahun-tahun. Usaha-usaha ini kini telah membuktikan bahawa embrio ikan zebra dan dewasa boleh digunakan sebagai model penyakit buah pinggang manusia yang boleh merumuskan semula pelbagai aspek disfungsi buah pinggang yang dilihat pada manusia dengan setia. Usaha ini juga telah menghasilkan banyak alat dan sumber yang berguna, termasuk talian mutan dan transgenik. Ini menawarkan peluang bukan sahaja untuk memahami mekanisme penyakit buah pinggang menggunakan ikan zebra tetapi menggunakannya untuk menemui ubat baru untuk merawat penyakit buah pinggang. Diabetes adalah penyumbang utama kepada komplikasi berkaitan buah pinggang pada manusia. Zebrafish menawarkan peluang di mana disfungsi buah pinggang yang berkaitan dengan diabetes juga boleh dikaji (Jör gens et al., 2012). Oleh itu, ikan zebra mempunyai asas yang sangat baik sebagai model penyakit dan menawarkan potensi yang sangat besar untuk mencari penyelesaian baru kepada penyakit manusia.

Ucapan terima kasih

Kami berterima kasih kepada Tarique Anwar dan Supriya Borah atas perbincangan dan komen mereka. SF ialah penerima DBT (DBT/2015/ILS/361) dan UR ialah penerima persekutuan DST-Inspire. Penyelidikan di makmal RKS disokong oleh SERB-EMR (EMR/2016/003780) dan dana intramural daripada ILS, yang merupakan institut autonomi DBT, Kerajaan India.

Sumbangan pengarang

SF mengandung dan menulis manuskrip pertama. PBB dan RKS membincangkan dan mengubah suai manuskrip.

Rujukan

1. AMSTERDAM A, BURGESS S, GOLLING G, CHEN W, SUN Z, TOWNSEND K, FARRINGTON S, HALDI M, HOPKINS N (1999). Skrin mutagenesis sisipan berskala besar dalam ikan zebra. Gen Dev 13: 2713–2724.

2.ANZENBERGER U (2006). Penjelasan proses pengangkutan endositik yang bergantung kepada megalin/LRP2-dalam pronephros ikan zebra larva. J Sel Sci 119: 2127–2137.

3.BARRODIA P, PATRA C, SWAIN RK (2018). Domain tangan EF yang mengandungi 2 (Efhc2) adalah penting untuk pembahagian distal pronephros dalam ikan zebra. Biosci Sel 8: 53.

4.BEGEMANN G, SCHILLING TF, RAUCH GJ, GEISLER R, INGHAM PW (2001). Mutasi tanpa leher ikan zebra mendedahkan keperluan untuk raldh2 dalam isyarat mesodermal yang membentuk otak belakang. Perkembangan 128: 3081–3094.

5. BIKBOV B, PURCELL CA, LEVEY AS, SMITH M, ABDOLI A, ABEBE M, ADEBAYO OM, AFARIDEH M, AGARWAL SK, AGUDELO-BOTERO M, et al., (2020). Beban global, serantau dan kebangsaan penyakit buah pinggang kronik, 1990–2017: analisis sistematik untuk Kajian Beban Global Penyakit 2017. Lancet 395: 709–733.

6.BILL BR, PETZOLD AM, CLARK KJ, SCHIMMENTI LA, EKKER SC (2009). Primer untuk kegunaan morpholino dalam ikan zebra. Ikan Zebra 6: 69–77.

7. BINGHAM C, ELLARD S, COLE TRP, JONES KE, ALLEN LIS, GOODSHIP JA, GOODSHIP THJ, BAKALINOVA-PUGH D, RUSSELL GI, WOOLF AS, NICHOLLS AJ, HATTERSLEY AT (2002). Buah pinggang yang berfungsi bersendirian dan pelbagai kecacatan saluran kemaluan yang dikaitkan dengan mutasi faktor nuklear hepatosit-1b. Int Buah Pinggang 61: 1243–1251.

8.BOCH J, BONAS U (2010). Xanthomonas AvrBs3 Pengesan Jenis Keluarga III: Penemuan dan Fungsi. Annu Rev Phytopathol 48: 419–436.

9.BOHN S, THOMAS H, TURAN G, ELLARD S, BINGHAM C, HATTERSLEY AT, RYFFEL GU (2003). Sifat Molekul dan Morfogenetik yang Berbeza bagi Mutasi dalam Gen HNF1b Manusia yang Membawa kepada Perkembangan Buah Pinggang Yang Cacat. J Am Soc Nephrol 14: 2033–2041.

10.CANTAGREL V, SILHAVY JL, BIELAS SL, SWISTUN D, MARSH SE, BERTRAND JY, AUDOLLENT S, ATTIÉ-BITACH T, HOLDEN KR, DOBYNS WB, et al., (2008). Mutasi dalam Gen Cilia ARL13B Membawa kepada Bentuk Klasik Sindrom Joubert. Am J Hum Genet 83: 170–179.

11.CAO Y, SEMANCHIK N, LEE SH, SOMLO S, BARBANO PE, COIFMAN R, SUN Z (2009). Skrin pengubah suai kimia mengenal pasti perencat HDAC sebagai penindas model PKD. Proc Natl Acad Sci 106: 21819–21824.

12. CARNEY EF (2020). Kesan penyakit buah pinggang kronik terhadap kesihatan global. Nat Rev Nephrol 16: 251–251.

13. CHAMBERS BE, WINGERT RA (2016). Nenek moyang buah pinggang: Peranan dalam penyakit buah pinggang dan penjanaan semula. Sel Stem J Dunia 8: 367–375.

14. CHANG RLS, DEEN WM, ROBERTSON CR, BENNETT CM, GLASSOCK RJ, BRENNER BM, TROY JL, UEKI IF, RASMUSSEN B (1976). Permselectivity dinding kapilari glomerular. Kajian glomerulonefritis eksperimen pada tikus menggunakan dextran neutral. J Clin Invest 57: 1272–1286.

15. CHRISTOU-SAVINA S, BEALES PL, OSBORN DPS (2015). Penilaian Fungsi Buah Pinggang Ikan Zebra Menggunakan Ujian Kelegaan Pendarfluor. J Vis Exp 96: e52540.

16.CIANCIOLO COSENTINO C, ROMAN BL, DRUMMOND IA, HUKRIEDE NA (2010). Suntikan Mikro Intravena Larva Ikan Zebra untuk Mengkaji Kecederaan Buah Pinggang Akut. J Vis Exp 42: e2079.

17.CIANCIOLO COSENTINO C, SKRYPNYK NI, BRILLI LL, CHIBA T, NOVITSKAYA T, WOODS C, WEST J, KOROTCHENKO VN, MCDERMOTT L, DAY BW, DAVID SON AJ, HARRIS RC, DE CAESTECKER MP, HUKRIEDE NA (2013). Histone Deacetylase Inhibitor Meningkatkan Pemulihan selepas AKI. J Am Soc Nephrol 24: 943–953.

18. COPPER JE, BUDGEON LR, FOUTZ CA, VAN ROSSUM DB, VANSELOW DJ, HUBLEY MJ, CLARK DP, MANDRELL DT, CHENG KC (2018). Analisis perbandingan teknik penetapan dan pemasukan untuk penyediaan histologi ikan zebra yang dioptimumkan.

19. Comp Biochem Physiol Bahagian C Toxicol Pharmacol 208: 38–46. CREWS DC, BELLO AK, SAADI G (2019). Beban, akses dan jurang dalam penyakit buah pinggang. Rev Nefrol Dial y Traspl 39: 1–11.

20.CURADO S, STAINIER DYR, ANDERSON RM (2008). Ablasi sel/ tisu pengantara Nitroreductase dalam ikan zebra: kaedah ablasi terkawal secara spatial dan sementara dengan aplikasi dalam kajian pembangunan dan penjanaan semula. Nat Protoc 3: 948–954.

21.CURRARINO G, COLN D, PENGUNDI T (1981). Triad anomali anorektal, sakral dan presakral. Am J Roentgenol 137: 395–398.

22.DESGRANGE A, CEREGHINI S (2015). Corak Nephron: Pelajaran daripada Xenopus, Zebrafish dan Kajian Tikus. Sel 4: 483–499.

23.DIEP CQ, MA D, DEO RC, HOLM TM, NAYLOR RW, ARORA N, WINGERT RA, BOLLIG F, DJORDJEVIC G, LICHMAN B, ZHU H, IKENAGA T, ONO F, ENGLERT C, COWAN CA, HUKRIEDE NA, HANDIN RI, DAVIDSON AJ (2011). Pengenalpastian progenitor nefron dewasa yang mampu penjanaan semula buah pinggang dalam ikan zebra. Alam 470: 95–100.

24.DIEP CQ, PENG Z, UKAH TK, KELLY PM, DAIGLE R V., DAVIDSON AJ (2015). Perkembangan mesonephros ikan zebra. genesis 53: 257–269.

25. DRUMMOND I (2003). Membuat buah pinggang ikan zebra: kisah dua tiub. Trend Sel Biol 13: 357–365.

26.DRUMMOND IA, MAJUMDAR A, HENTSCHEL H, ELGER M, SOLNICA-KREZEL L, SCHIER AF, NEUHAUSS SCF, STEMPLE DL, ZWARTKRUIS F, RANGINI Z, DRIEVER W, FISHMAN MC (1998). Perkembangan awal pronephros ikan zebra dan analisis mutasi yang mempengaruhi fungsi pronephric. Perkembangan 125: 4655–4667.

27.DWORSCHAK GC, REUTTER HM, LUDWIG M (2021). Sindrom Currarino: kajian genetik komprehensif tentang gangguan kongenital yang jarang berlaku. Orphanet J Rare Dis 16: 167.

28. EISEN JS, SMITH JC (2008). Mengawal eksperimen morpholino: jangan berhenti membuat antisense. Perkembangan 135: 1735–1743.

29.EL-BROLOSY MA, STAINIER DYR (2017). Pampasan genetik: Fenomena mencari mekanisme Ed. C Moens. PLOS Genet 13: e1006780.

30.ELIZONDO MR, BUDI EH, PARICHY DM (2010). Trpm7 Peraturan Homeostasis Kation in vivo dan Fungsi Buah Pinggang Melibatkan Stanniocalcin 1 dan Fgf23. Endokrinologi 151: 5700–5709.

31.ELMONEM M, BERLINGERIO S, VAN DEN HEUVEL L, DE WITTE P, LOWE M, LEVTCHENKO E (2018). Penyakit Renal Genetik: Peranan Model Ikan Zebra yang Muncul. Sel 7: 130.

32. ELMONEM MA, KHALIL R, KHODAPARAST L, KHODAPARAST L, ARCOLINO FO, MORGAN J, PASTORE A, TYLZANOWSKI P, NY A, LOWE M, DE WITTE PA, BAELDE HJ, VAN DEN HEUVEL LP, LEVTCHENKO E (2017). Mutan ikan zebra Cystinosis (ctn) menunjukkan disfungsi glomerular dan tiub pronephric. Sci Rep 7: 42583.

33.ENE-IORDACHE B, PERICO N, BIKBOV B, CARMINATI S, REMUZZI A, PERNA A, ISLAM N, BRAVO RF, ALECKOVIC-HALILOVIC M, ZOU H, et al., (2016). Penyakit buah pinggang kronik dan risiko kardiovaskular di enam wilayah di dunia (ISN-KDDC): kajian keratan rentas. Lancet Glob Heal 4: e307–e319.

34. EVAN AP (2010). Fisiopatologi dan etiologi pembentukan batu dalam buah pinggang dan saluran kencing. Pediatr Nephrol 25: 831–841.

35. FERGUSON JL, SHIVE HR (2019). Imunofluoresensi Berjujukan dan Imunohistokimia pada Embrio Ikan Zebra Tersection. J Vis Exp 147: e59344.

36.FERNÁNDEZ R, MALNIC G (1998). H ditambah ATPase dan Cl − Interaksi dalam Pengawalseliaan pH Sel MDCK. J Membr Biol 163: 137–145.

37. FOREMAN KJ, MARQUEZ N, DOLGERT A, FUKUTAKI K, FULLMAN N, McGaughey M, PLETCHER MA, SMITH AE, TANG K, YUAN CW, et al., (2018). Meramalkan jangka hayat, tahun kehilangan nyawa, dan semua sebab dan kematian khusus sebab untuk 250 punca kematian: rujukan dan senario alternatif untuk 2016–40 untuk 195 negara dan wilayah. Lancet 392: 2052–2090. 38.GELDSETZER P, MANNE-GOEHLER J, THEILMANN M, DAVIES JI, AWASTHI A, VOLLMER S, JAACKS LM, BÄRNIGHAUSEN T, ATUN R (2018). Diabetes dan Hipertensi di India. JAMA Intern Med 178: 363.

39.HANKE N, STAGGS L, SCHRODER P, LITTERAL J, FLEIG S, KAUFELD J, PAULI C, HALLER H, SCHIFFER M (2013). "Zebrafishing" untuk Gen Novel yang Berkaitan dengan Penghalang Penapisan Glomerular. Biomed Res Int 2013: 1–12.

40. HELLMAN NE, LIU Y, MERKEL E, AUSTIN C, LE CORRE S, BEIER DR, SUN Z, SHARMAN, YODER BK, DRUMMOND IA(2010). Faktor transkripsi zebrafish foxj1a mengawal fungsi silia sebagai tindak balas kepada kecederaan dan regangan epitelium. Proc Natl Acad Sci USA 107: 18499–18504.

41.HENTSCHELDM,PARKKM,CILENTIL,ZERVOSAS,DRUMMONDI,BONVENTRE J V. (2005). Kegagalan buah pinggang akut dalam ikan zebra: sistem baru untuk mengkaji penyakit yang kompleks. Am J Physiol Physiol 288: F923–F929.

42. HILL NR, FATOBA ST, OKE JL, HIRST JA, O'CALLAGHAN CA, LASSERSON DS, HOBBSFDR(2016).GlobalPrevalenceofChronic KidneyDisease–Asystematic Review and Meta-Analysis Ed. G Remuzzi. PLoS One 11: e0158765.

43. HOWE K, CLARK MD, TORROJA CF, TORRANCE J, BERTHELOT C, MUFFATO M, COLLINS JE, HUMPHREY S, MCLAREN K, MATTHEWS L, et al., (2013). Urutan genom rujukan ikan zebra dan hubungannya dengan genom manusia. Alam 496: 498–503.

44. JAFFE KM, THIBERGE SY, BISHER ME, BURDINE RD (2010). Pengimejan Silia dalam Zebrafish. Dalam Kaedah dalam Biologi Sel (Ed. Cassimeris L, Tran P). Jld.97. Academic Press, hlm. 415-435.

45. JAIN S (2014). Perkembangan Buah Pinggang dan Anomali Berkaitan. Dalam Patobiologi Penyakit Manusia Elsevier, ms 2701–2715.

46. ​​JHA V, GARCIA-GARCIA G, ISEKI K, LI Z, NAICKER S, PLATTNER B, SARAN R, WANG AYM, YANG CW (2013). Penyakit buah pinggang kronik: Dimensi dan perspektif global. Lancet 382: 260–272.

47.JOBST-SCHWAN T, HOOGSTRATEN CA, KOLVENBACH CM, SCHMIDT JM, KOLB A, EDDY K, SCHNEIDER R, ASHRAF S, WIDMEIER E, MAJMUNDAR AJ, HILDEBRANDT F (2019). Rawatan kortikosteroid memburukkan lagi sindrom nefrotik dalam model ikan zebra kalah mati magi2a. Int Buah Pinggang 95: 1079–1090.

48.JOHNSON CS, HOLZEMER NF, WINGERT RA (2011). Ablasi Laser dari Zebrafish Pronephros untuk Mengkaji Penjanaan Semula Epitelium Renal. J Vis Exp 54: 2845.

49.JÖRGENS K, HILLEBRANDS JL, HAMMES HP, KROLL J (2012). Zebrafish: Model untuk Memahami Komplikasi Diabetes. Exp Clin Endokrinol Diabetes 120: 186–187.

50.KAMEI CN, LIU Y, DRUMMOND IA (2015). Penjanaan Semula Buah Pinggang dalam Ikan Zebra Dewasa oleh Kecederaan Akibat Gentamicin. J Vis Exp 102: e51912.

51.KAUFMAN CK, WHITE RM, ZON L (2009). Pemeriksaan genetik kimia dalam embrio ikan zebra. Nat Protoc 4: 1422–1432.

52.KAWASUMI M, NGHIEM P (2007). Genetik Kimia: Menjelaskan Sistem Biologi dengan Sebatian Molekul Kecil. J Invest Dermatol 127: 1577–1584.

53.KIM BH, ZHANG GJ (2020). Menjana garisan ikan zebra kalah mati yang stabil dengan memadamkan serpihan kromosom besar menggunakan berbilang gRNA. G3 Gen, Genom, Genet 10: 1029–1037.

54.KRAMER-ZUCKER AG (2005). Aliran bendalir didorong silia dalam pronephros ikan zebra, otak, dan vesikel Kupffer diperlukan untuk organogenesis normal. Perkembangan 132: 1907–1921.

55.KRAMER-ZUCKER AG, WIESSNER S, JENSEN AM, DRUMMOND IA (2005). Organisasi alat penapisan pronephric dalam ikan zebra memerlukan Nephrin, Podocin, dan protein domain FERM Mata Mozek. Dev Biol 285: 316–329.

56. KRISHNAMURTHY VG (1976). Sitofisiologi Korpuskel Stannius. Int Rev Cytol 46: 177–249.

57. KROEGER PT, DRUMMOND BE, MICELI R, MCKERNAN M, GERLACH GF, MARRA AN, FOX A, MCCAMPBELL KK, LESHCHINER I, RODRIGUEZ-MARI A, BREMILLER R, THUMMEL R, DAVIDSON AJ, POSTLETHWAIT WINGESS, J, WINGESS RA (2017). Zeppelin mutan buah pinggang ikan zebra mendedahkan bahawa brca2/fancd1 adalah penting untuk pembangunan pronephros. Dev Biol 428: 148–163.

58. LAWSON ND, WOLFE SA (2011). Pendekatan Genetik Hadapan dan Songsang untuk Analisis Perkembangan Vertebrata dalam Ikan Zebra. Sel Pembangun 21: 48–64.

59. LEE S, KIM EJ, CHO SI, PARK H, SEO SH, SEONG MW, PARK SS, JUNG SE, LEE SC, PARK KW, KIM HY (2018). Spektrum Varian Patogenik MNX1 dan Ciri-ciri Klinikal Berkaitan dalam Pesakit Korea dengan Sindrom Currarino. Ann Lab Med 38: 242–248.

60. LEVEY AS, ASTOR BC, STEVENS LA, CORESH J (2010). Penyakit buah pinggang kronik, kencing manis dan hipertensi: Apa itu nama? Int Buah Pinggang 78: 19–22.

61.LINDNER TH, NJOLSTAD PR, HORIKAWA Y, BOSTAD L, BELL GI, SOVIK O (1999). Sindrom baru diabetes mellitus, disfungsi buah pinggang dan kecacatan alat kelamin yang dikaitkan dengan pemadaman separa domain pseudo-POU faktor nuklear hepatosit-1beta. Hum Mol Genet 8: 2001–2008.

62. LIU K, PETREE C, REQUENA T, VARSHNEY P, VARSHNEY GK (2019). Memperluas Kotak Alat CRISPR dalam Zebrafish untuk Mengkaji Perkembangan dan Penyakit. Biol Dev Sel Hadapan 7: 13.

63.LIU Y, LUO D, LEI Y, HU W, ZHAO H, CHENG CHK (2014). Pendekatan pengantaraan TALEN yang sangat berkesan untuk gangguan gen yang disasarkan dalam Xenopus tropicalis dan ikan zebra. Kaedah 69: 58–66.

64. LIU Y, PATHAK N, KRAMER-ZUCKER A, DRUMMOND IA (2007). Isyarat notch mengawal pembezaan mengangkut epithelia dan sel berbilang dalam pronephros ikan zebra. Perkembangan 134: 1111–1122.

65. LUNT SC, HAYNES T, PERKINS BD (2009). Mutan pengangkutan intraflagellar ikan zebra ift57, ift88, dan ift172 mengganggu silia tetapi tidak menjejaskan isyarat landak. Dev Dyn 238: 1744–1759.

66. MANGOS S, LAM P y., ZHAO A, LIU Y, MUDUMANA S, VASILYEV A, LIU A, DRUMMOND IA (2010). Gen ADPKD pkd1a/b dan pkd2 mengawal pembentukan matriks ekstraselular. Dis Model Mech 3: 354–365.

67.MARRA AN, ULRICH M, WHITE A, SPRINGER M, WINGERT RA (2017). Memvisualisasikan Sel Berbilang Silia dalam Ikan Zebra Melalui Protokol Gabungan Pendarfluor Seluruh Gunung Di Situ Hibridisasi dan Imunofluoresensi. J Vis Exp 129: 56261.

68. MCCAMPBELL KK, SPRINGER KN, WINGERT RA (2015). Atlas Dinamik Selular semasa Penjanaan Semula Buah Pinggang Dewasa Ikan Zebra. Sel Stem Int 2015: 1–19.

69.MCKEE RA, WINGERT RA (2015). Patologi Buah Pinggang Ikan Zebra: Model Kecederaan Buah Pinggang Akut yang Muncul. Curr Pathobiol Rep 3: 171–181.

70. MINGEOT-LECLERCQ MP, TULKENS PM (1999). Aminoglycosides : Nefrotoksisiti. Ejen Antimikrob Chemother 43(5): 1003–1012.

71. MORALES EE, HANDA N, DRUMMOND BE, CHAMBERS JM, MARRA AN, ADDI EGO A, WINGERT RA (2018). Homeogene emx1 diperlukan untuk pembangunan segmen distal nefron dalam ikan zebra. Sci Rep 8: 18038.

72.MULLINS MC, HAMMERSCHMIDT M, HAFFTER P, NÜSSLEIN-VOLHARD C (1994). Mutagenesis berskala besar dalam ikan zebra: mencari gen yang mengawal perkembangan dalam vertebrata. Curr Biol 4: 189–202.

73. NAYLOR RW, CHANG H-HG, QUBISI S, DAVIDSON AJ (2018). Mekanisme baru pembentukan kelenjar dalam ikan zebra yang melibatkan transdifferentiation sel epitelium buah pinggang dan penyemperitan sel hidup. Elife 7: e38911.

74. NAYLOR RW, DAVIDSON AJ (2017). Pembentukan tubul pronephric dalam ikan zebra: morfogenesis dan penghijrahan. Pediatr Nephrol 32: 211–216.

75.NAYLOR RW, PRZEPIORSKI A, REN Q, YU J, DAVIDSON AJ (2013). HNF1 bIs Penting untuk Segmentasi Nefron semasa Nefrogenesis. J Am Soc Nephrol 24: 77–87.

76.OTT E, WENDIK B, SRIVASTAVA M, PACHO F, TÖCHTERLE S, SALVENMOSER W, MEYER D (2016). Morfogenesis tubul pronephric dalam ikan zebra bergantung pada penindasan Mnx-mediated irx1b dalam mesoderm perantaraan. Dev Biol 411: 101–114.

77.OUTTANDY P, RUSSELL C, KLETA R, BOCKENHAUER D (2019). Zebrafish sebagai model untuk fungsi dan penyakit buah pinggang. Pediatr Nephrol 34: 751–762.

78.PALMYRE A, LEE J, RYKLIN G, CAMARATA T, SELIG MK, DUCHEMIN AL, NOWAK P, ARNAOUT MA, DRUMMOND IA, VASILYEV A (2014). Migrasi Epitelium Kolektif Memacu Pembaikan Buah Pinggang selepas Kecederaan Akut Ed. AJ Kabla. PLoS One 9: e101304.

79.PATTON EE, ZON LI (2001). Seni dan reka bentuk skrin genetik: ikan zebra. Nat Rev Genet 2: 956–966.

80.PIECZYNSKI J, MARGOLIS B (2011). Kompleks protein yang mengawal kekutuban epitelium buah pinggang. Am J Physiol Physiol 300: F589–F601.

81.POUREETEZADI SJ, WINGERT RA (2016). Ikan kecil, tangkapan besar: ikan zebra sebagai model untuk penyakit buah pinggang. Int Buah Pinggang 89: 1204–1210.

82.RAJAPURKAR MM, JOHN GT, KIRPALANI AL, ABRAHAM G, AGARWAL SK, ALMEIDA AF, GANG S, GUPTA A, MODI G, PAHARI D, PISHARODY R, PRAKASH J, RAMAN A, RANA DS, SHARMA RK, SAHOO R, SAKHUJA V, TATAPUDI RR, JHA V (2012). Apa yang kita tahu tentang penyakit buah pinggang kronik di India: laporan pertama pendaftaran CKD India. BMC Nephrol 13: 10.

83.RAJASEKARAN SA, PALMER LG, MOON SY, PERALTA SOLER A, APODACA GL, HARPER JF, ZHENG Y, RAJASEKARAN AK (2001). Aktiviti Na,K-ATPase Diperlukan untuk Pembentukan Persimpangan Tegang, Desmosom dan Aruhan Kekutuban dalam Sel Epitelium Ed. G Guidotti. Sel Biol Mol 12: 3717–3732.

84. ROBERTS RJ, ELLIS AE (2012). Anatomi dan Fisiologi Teleost. Dalam Fish Pathol Fourth Ed (Ed. Roberts RJ) Wiley, hlm. 17–61.

85.ROBU ME, LARSON JD, NASEVICIUS A, BEIRAGHI S, BRENNER C, FARBER SA, EKKER SC (2007). p53 Pengaktifan oleh Knockdown Technologies Ed. M Mullins. PLoS Genet 3: e78.

86.ROSSI A, KONTARAKIS Z, GERRI C, NOLTE H, HÖLPER S, KRÜGER M, STAINIER DYR (2015). Pampasan genetik disebabkan oleh mutasi yang merosakkan tetapi bukan kejatuhan gen. Alam 524: 230–233.

87.SABALIAUSKAS NA, FOUTZ CA, MEST JR, BUDGEON LR, SIDOR AT, GERSHENSON JA, JOSHI SB, CHENG KC (2006). Histologi ikan zebra berkeupayaan tinggi. Kaedah 39: 246–254.

88. SERTORI R, TRENGOVE M, BASHEER F, WARD AC, LIONGUE C (2016). Penyuntingan genom dalam ikan zebra: gambaran keseluruhan praktikal. Fungsi Ringkas Genomik 15: 322–330.

89. SHAH AN, DAVEY CF, WHITE BIRCH AC, MILLER AC, MOENS CB (2016). Pemeriksaan Genetik Terbalik Pantas Menggunakan CRISPR dalam Zebrafish. Ikan Zebra 13: 152–153.

90. SHAO W, ZHONG D, JIANG H, HAN Y, YIN Y, LI R, QIAN X, CHEN D, JING L (2020). Gentamicin aminoglikosida baharu menunjukkan nefrotoksisiti dan ototoksisiti rendah dalam embrio ikan zebra. J Appl Toxicol 41:1063-1075.

91.SHARMA KR, HECKLER K, STOLL SJ, HILLEBRANDS JL, KYNAST K, HERPEL E, PORUBSKY S, ELGER M, HADASCHIK B, BIEBACK K, HAMMES HP, NAWROTH PP, KROLL J (2016). ELMO1 melindungi struktur buah pinggang dan ultrafiltrasi dalam perkembangan buah pinggang dan dalam keadaan diabetes. Sci Rep 6: 37172.

92.SMYTH IM, CULLEN-MCEWEN LA, CARUANA G, BLACK MJ, BERTRAM JF (2017). Perkembangan Buah Pinggang. Dalam Fisiologi Fetal dan Neonatal Elsevier, ms 953-964.e4.

93. SULLIVAN-BROWN J, BISHER ME, BURDINE RD (2011). Benamkan, pembahagian bersiri dan pewarnaan embrio ikan zebra menggunakan resin JB-4. Nat Protoc 6: 46–55.

94.SULLIVAN-BROWN J, SCHOTTENFELD J, OKABE N, HOSTETTER CL, SERLUCA FC, THIBERGE SY, BURDINE RD (2008). Mutasi ikan zebra yang mempengaruhi motilitas silia berkongsi fenotip sista yang serupa dan mencadangkan mekanisme pembentukan sista yang berbeza daripada morfan pkd2. Dev Biol 314: 261–275.

95. SUMMERTON J (1999). Oligomer antisense Morpholino: kes untuk jenis struktur bebas RNase H. Biochim Biophys Acta - Struktur Gen Expr 1489: 141–158.

96.SUN, Z. AMSTERDAM, A. PAZOUR, GJ COLE, DG MILLER SM (2004). Skrin genetik dalam ikan zebra mengenal pasti gen silia sebagai punca utama buah pinggang sista. Perkembangan 131: 4085–4093.

97.TAHARA T, OGAWA K, TANIGUCHI K (1993). Ontogeni Pronephros dan Mesonephros dalam Katak Bercakar Afrika Selatan, Xenopus laevis Daudin, dengan Rujukan Khas kepada Penampilan dan Pergerakan Sel Renin-imunopositif. Exp Anim 42: 601–610.

98. TALLAFUSS A, GIBSON D, MORCOS P, LI Y, SEREDICK S, EISEN J, WASHBOURNE P (2012). Menghidupkan dan MATI fungsi gen menggunakan morpholinos foto deria dan antisense dalam ikan zebra. Perkembangan 139: 1691–1699.

99.TAVARES B, JACINTO R, SAMPAIO P, PESTANA S, PINTO A, VAZ A, ROXO-ROSA M, GARDNER R, LOPES T, SCHILLING B, HENRY I, SAÚDE L, LOPES SS (2017). Isyarat Notch/Her12 memodulasi, nisbah silia motil/imotil di hilir Foxj1a dalam penganjur kiri-kanan ikan zebra. Elife 6: e25165.

100.THOMAS R, KANSO A, SEDOR JR (2008). Penyakit Buah Pinggang Kronik dan Komplikasinya. Prim Care - Clin Off Pract 35: 329–344.

101.VARMA PP (2015). Kelaziman penyakit buah pinggang kronik di India - Ke mana kita hendak pergi? India J Nephrol 25: 133–135.

102.VARSHNEY GK, BURGESS SM (2014). Mutagenesis dan sumber fenotaip dalam ikan zebra untuk mengkaji pembangunan dan penyakit manusia. Fungsi Ringkas Genomik 13: 82–94.

103.VARSHNEY GK, CARRINGTON B, PEI W, BISHOP K, CHEN Z, FAN C, XU L, JONES M, LAFAVE MC, LEDIN J, SOOD R, BURGESS SM (2016). Aliran kerja genomik berfungsi dengan prestasi tinggi berdasarkan CRISPR/Cas9-pengantara mutagenesis sasaran dalam ikan zebra. Nat Protoc 11: 2357–2375.

104.VARUGHESE S, ABRAHAM G (2018). Penyakit Buah Pinggang Kronik di India. Clin J Am Soc Nephrol 13: 802–804.

105.VASILYEV A, LIU Y, MUDUMANA S, MANGOS S, LAM PY, MAJUMDAR A, ZHAO J, POON KL, KONDRYCHYN I, KORZH V, DRUMMOND IA (2009). Migrasi Sel Kolektif Memacu Morfogenesis Nefron Buah Pinggang Ed. DL Stemple. PLoS Biol 7: e1000009.

106.VERLANDER JW (1998). Fungsi Ginjal Normal dan Perubahan Fungsi Ginjal dalam Keadaan Nefrotoksisiti Ultrastruktur Normal Buah Pinggang dan Saluran Kencing Bawah. Toksik Pathol 26: 1–17.

107.WILSON PD (2011). Kekutuban apico-basal dalam epithelia penyakit buah pinggang polikistik. Biochim Biophys Acta - Asas Mol Dis 1812: 1239–1248.

108.WINGERT RA, DAVIDSON AJ (2011). Nefrogenesis ikan zebra melibatkan perubahan ekspresi spatiotemporal dinamik dalam progenitor buah pinggang dan isyarat penting daripada asid retinoik dan irx3b. Dev Dyn 240: 2011–2027.

109.WINGERT RA, SELLECK R, YU J, SONG HD, CHEN Z, SONG A, ZHOU Y, THISSE B, THISSE C, MCMAHON AP, DAVIDSON AJ (2007). Gen cdx dan asid retinoik mengawal kedudukan dan pembahagian pronephros ikan zebra. PLoS Genet 3: 1922–1938.

110.YAKULOV TA, TODKAR AP, SLANCHEV K, WIEGEL J, BONA A, GROSS M, SCHOLZ A, HESS I, WURDITSCH A, GRAHAMMER F, et al., (2018). CXCL12 dan MYC mengawal metabolisme tenaga untuk menyokong tindak balas penyesuaian selepas kecederaan buah pinggang. Nat Commun 9: 1–15.

111.YAMAGUCHI T, HAMPSON SJ, REIF GA, HEDGE AM, WALLACE DP (2006). Kalsium Memulihkan Fenotip Pembiakan Normal dalam Sel Epitelium Penyakit Ginjal Polikistik Manusia. J Am Soc Nephrol 17: 178–187.

112.ZAGHLOUL NA, KATSANIS N (2011). Ujian Ikan Zebra untuk Ciliopati. Dalam Kaedah dalam Biologi Sel (Ed. Detrich HW, Westerfield M, Zon L. I). Vol. 105. Academic Press, hlm. 257-272.

113.ZHAO C, MALICKI J (2007). kecacatan genetik silia pronephric dalam ikan zebra. Mech Dev 124: 605–616.

114.ZHOU W, DAI J, ATTANASIO M, HILDEBRANDT F (2010). Nephrocystin-3 diperlukan untuk fungsi ciliary dalam embrio ikan zebra. Am J Physiol Physiol 299: F55–F62.

115.ZHOU W, HILDEBRANDT F (2012). Kecederaan podosit yang boleh diinduksi dan proteinuria dalam ikan zebra transgenik. J Am Soc Nephrol 23: 1039–1047.

Untuk maklumat lanjut: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501