Hubungi: Audrey Hu Whatsapp/hp: 0086 13880143964 E-mel:audrey.hu@wecistanche.com

Abstrak:Kebimbangan yang semakin meningkat terhadap kesihatan keseluruhan memacu pasaran global bahan semula jadi bukan sahaja dalam industri makanan tetapi juga dalam bidang kosmetik. Dalam kajian ini, pemeriksaan terhadap aplikasi kosmetik yang berpotensi bagi ekstrak akueus daripada tiga bahasa Icelandrumpai lauts yang dihasilkan oleh medan elektrik berdenyut (PEF) telah dilakukan. Ekstrak yang dihasilkan oleh PEF daripada Ulva lactuca, Alaria esculenta dan Palmaria palmata dibandingkan dengan pengekstrakan air panas tradisional dari segi kandungan polifenol, flavonoid dan karbohidrat. Lebih-lebih lagi,antioksidansifat dan aktiviti penghambatan enzimatik dinilai dengan menggunakan ujian in vitro. PEF mempamerkan hasil yang sama dengan kaedah tradisional, menunjukkan beberapa kelebihan seperti sifat bukan haba dan masa pengekstrakan yang lebih pendek. Antara tiga spesies Iceland, Alaria esculenta menunjukkan kandungan fenolik tertinggi (nilai min 8869.7 µg GAE/g dw) dan flavonoid (min nilai 12,098.7 µg QE/g dw) sebatian, juga mempamerkan yang tertinggiantioksidankapasiti. Selain itu, ekstrak Alaria esculenta mempamerkan aktiviti anti-enzimatik yang sangat baik (76.9, 72.8, 93.0 dan 100 peratus untuk kolagenase, elastase,tyrosinaseandhyaluronidase, masing-masing) untuk kegunaannya dalam produk pemutihan kulit dan anti-penuaan. Oleh itu, kajian awal kami mencadangkan bahawa ekstrak berasaskan Iceland Alaria esculenta yang dihasilkan oleh PEF boleh digunakan sebagai bahan berpotensi untuk formulasi kosmetik dan kosmetik semulajadi.

Kata kunci:makroalga; Ulva lactuca; Alaria esculenta; Palmaria palmata; Pengekstrakan berbantukan PEF; sebatian bioaktif; pengekstrakan hijau; bahan semula jadi; kosmetik

cistanche adalah bahan semulajadi pemutih

1. Pengenalan

Dalam beberapa tahun kebelakangan ini, permintaan untuk sebatian bioaktif baharu dengan potensi manfaat kesihatan telah mengalami peningkatan yang ketara. Banyak kumpulan penyelidikan telah memberi penekanan kepada penyelidikan ke atas organisma marin, seperti makroalga, untuk mencari sumber baru dan mampan bagi sebatian semula jadi untuk aplikasi dalam industri makanan pertanian, farmakologi, makanan dan, lebih baru-baru ini, dalam bidang kosmetik [1,2] . Makroalga ialah kumpulan organisma fotosintetik yang besar dan heterogen yang dicirikan oleh biodiversiti yang besar dan komposisi biokimia yang kompleks. Mengikut struktur kimia dan kandungan pigmennya, makroalga boleh dibahagikan kepada tiga keturunan termasuk alga perang (Phaeophyceae), alga merah (Rhodophyta) dan alga hijau (Viridiplantae). Sebatian alga disimpan di dalam sitoplasma sel atau terikat pada membran sel; Oleh itu, gangguan sel adalah penting untuk pengevalan biojisim alga. Selain itu, komposisi dinding sel sangat berubah-ubah antara spesies alga dari membran kecil kepada struktur kompleks berbilang lapisan, menjadikan pemulihan produk alga sebagai satu cabaran [3]. Secara amnya, rumpai laut merupakan sumber polisakarida, protein, lipid, dan pelbagai jenis metabolit sekunder yang sangat baik seperti sebatian fenolik, terpenoid, karotenoid, pigmen dan derivatif nitrogen [4-6]. Walaupun metabolit primer mempunyai kepentingan yang sangat penting, data terkini telah menunjukkan bahawa kandungan metabolit sekunder menentukan aktiviti biologirumpai lautekstrak [7].

Kebimbangan yang semakin meningkat terhadap kesihatan dan kesejahteraan keseluruhan, serta kesedaran tentang bahan kimia berbahaya dalam produk harian, memacu pasaran global bahan semula jadi dan organik [8]. Sejak beberapa tahun lalu, kesedaran pengguna terhadap keutamaan bahan semula jadi dan produk mesra alam telah meluas daripada industri makanan kepada industri kosmetik dan penjagaan diri [9]. Tambahan pula, dalam konteks semasa pemanasan global dan isu ekologi, kesedaran orang ramai tentang isu alam sekitar telah meningkat. Memandangkan kebimbangan semasa ini, pengguna telah mengalihkan minat mereka ke arah produk hijau, sihat dan bebas kimia. Akibatnya, industri kosmetik kini menggantikan bahan kimia toksik dan bahan berbahaya dengan sebatian baru dan semula jadi bernilai tinggi untuk menghasilkan produk kecantikan "bersih secara kimia" [10].

Kosmetik secara tradisinya ditakrifkan sebagai produk untuk digunakan pada tubuh manusia untuk membersihkan, mencantikkan, atau mempromosikan daya tarikan tanpa menjejaskan fungsi penyusun badan. Walau bagaimanapun, trend baharu dan permintaan pengguna terkini telah menggalakkan pembangunan produk baharu yang membekalkan pelbagai faedah dengan usaha yang minimum. Istilah cosmeceutical kini kerap digunakan untuk menggambarkan produk kosmetik dengan bahan bioaktif yang mendakwa mempunyai manfaat perubatan atau seperti ubat [11]. Kosmeseutikal biasanya mengandungi bahan-bahan berfungsi seperti vitamin, fitokimia, enzim,antioksidandan/atau minyak pati [12]. Oleh kerana pelbagai sebatian bioaktif ini telah ditemui dalam makroalga, penyiasatan barurumpai lauts dan ekstrak alga marin telah terbukti sebagai bidang yang menjanjikan dalam kajian kosmeseutikal dan kosmetik [13,14].

Sebilangan metabolit sekunder yang diperoleh daripadarumpai lauts terkenal dengan kesan bermanfaat kesihatannya yang berharga pada kulit, seperti pelindung foto, pelembab,antioksidan, sifat anti-radang dan regeneratif [15]. Berdasarkan kesan berfaedah ini, alga digabungkan dalam produk kosmetik seperti pelindung matahari, produk anti-penuaan, serta untuk pencegahan hiperpigmentasi, manakala polisakarida digunakan untuk mengekalkan kulit lembap dan untuk mengelakkan kekeringan [16]. Semasa penuaan, protein matriks ekstraselular terdedah kepada aktiviti enzim proteolitik yang berlebihan seperti kolagenase dan elastase, mengakibatkan perubahan ketara pada kulit, seperti kedutan atau kehilangan keanjalan kulit. Pendekatan yang menjanjikan untuk mencegah penuaan kulit ekstrinsik ialah perencatan aktiviti kolagenase dan elastase oleh sebatian semula jadi. Ekstrak tumbuhan telah disiasat secara meluas dan didapati mempunyai aktiviti anti-kolagenase dan anti-elastase [17]. Walau bagaimanapun, terdapat sedikit maklumat mengenai aktiviti enzimatik perencatan ekstrak rumpai laut.

Kaedah pengekstrakan yang paling kerap digunakan untuk pengasingan bioaktif daripada rumpai laut adalah berdasarkan teknik konvensional. Namun begitu, penggunaan kaedah tradisional mempunyai beberapa kelemahan, seperti penggunaan jumlah pelarut organik yang tinggi, masa pengekstrakan yang lebih lama, suhu tinggi, masalah selektiviti, keperluan tenaga yang tinggi, dan pengekstrakan bersama sebatian yang tidak disasarkan atau mengganggu [18]. Oleh itu, teknik pengekstrakan baru berdasarkan prinsip kimia hijau mempunyai potensi minat [19].

Medan elektrik berdenyut (PEF) ialah teknologi pemprosesan makanan yang baru muncul, bukan haba dan cekap tenaga [20]. PEF melibatkan penggunaan denyutan medan elektrik biasanya pada voltan tinggi (julat kV) dan jangka masa pendek (mikro atau nano-saat) kepada produk yang diletakkan di antara dua elektrod [21]. Penggunaan denyutan elektrik menghasilkan pembentukan liang boleh balik atau tidak boleh balik dalam membran sel, ditakrifkan sebagai elektroporasi atau permeabilisasi elektro, yang seterusnya memudahkan penyebaran pelarut yang cepat dan peningkatan pemindahan jisim sebatian intraselular [22]. Aplikasi terkini menumpukan pada penggunaan tenaga elektrik berdenyut sebagai teknik pengekstrakan (PEF-assistedextraction) daripada bio-, makanan, dan produk pertanian [23]. Dengan rawatan PEF adalah mungkin untuk mendapatkan ekstrak dengan ketulenan yang lebih tinggi, meningkatkan kadar pengekstrakan sebatian bioaktif seperti polifenol, karotenoid, atau antosianin, dan menghapuskan penggunaan pelarut organik dan memendekkan masa pengekstrakan [24,25]. Rawatan PEF telah berjaya digunakan untuk pengekstrakan sebatian berharga daripada sumber marin yang berbeza, seperti protein [26-28], karbohidrat [29,30], lipid [31,32] dan pigmen seperti karotenoid, klorofil atau phycocyanin [22,33]. ,34] daripada mikroalga dan rumpai laut.

Oleh itu, objektif utama kajian ini adalah untuk menilai potensi aplikasi kosmetik ekstrak PEF daripada tiga spesies makroalga yang tumbuh di Iceland: U. lactuca (makroalga hijau), A. esculenta (makroalga coklat) dan P. palmata (makroalga merah) . Usaha Inan, untuk membangunkan bahan organik dan semula jadi untuk formulasi hijau, ekstraksi berbantukan PEF telah dicadangkan sebagai alternatif mesra alam kepada ekstraksi pelarut organik tradisional. Selepas proses pengekstrakan, berairrumpai lautekstrak dicirikan dari segi kandungan polifenol, flavonoid, dan karbohidrat. Lebih-lebih lagi,antioksidansifat dan aktiviti perencatan enzim telah dinilai dengan menggunakan ujian aktiviti in vitro. Keputusan yang dilaporkan di sini akan menyediakan asas untuk meningkatkan pemahaman makroalga coklat, merah dan hijau untuk menghasilkan bahan aktif untuk formulasi inovatif dalam produk kosmetik yang mengandungi sebatian aktif biologi yang diasingkan daripada sumber semula jadi dan mampan.

2. Keputusan dan Perbincangan

2.1. Pengekstrakan Berbantukan PEF untuk Pemprosesan Biojisim Rumpai Laut Iceland

Keputusan menunjukkan bahawa kekonduksian elektrik adalah tertinggi dalam ampaian yang disediakan daripada A. esculenta diikuti oleh P. palmata dan U. lactuca (p < {{0}}.05)="" (jadual="" 1).="" walau="" bagaimanapun,="" kesan="" jenis="" rawatan="" tidak="" dikenalpasti="" sebagai="" ketara="" (p=""> 0.05). Pengukuran kekonduksian elektrik telah berjaya digunakan oleh pengarang lain untuk menilai keberkesanan PEFtreatment dalam tisu biologi untuk pembebasan bahan ionik intraselular, akibat daripada peningkatan ketelapan membran sel [35-37].

Dalam kajian kami, keputusan tidak menunjukkan pelepasan bahan ini yang lebih kuat oleh PEF, kerana perubahan dalam kekonduksian yang disebabkan oleh rawatan pengekstrakan cenderung tertinggi dalam penggantungan HW. Kajian terdahulu telah membuat kesimpulan bahawa kekonduksian awal medium ekstraselular mempengaruhi keberkesanan elektroporasi tetapi terdapat kekurangan persetujuan sama ada terdapat hubungan positif atau negatif antara kedua-dua faktor ini [38]. Variasi dalam kekonduksian dan ciri-ciri bahan mungkin membuat perbandingan menjadi rumit. Dalam kajian kami, terdapat perbezaan besar antara kekonduksian suspensi A. esculenta dan dua spesies lain, yang tidak ditunjukkan dalam tahap perubahan kekonduksian semasa rawatan pengekstrakan. Telah dinyatakan bahawa kandungan abu rumpai laut perang boleh menyumbang lebih daripada 50 peratus daripada berat keringnya [39], yang sebahagian besarnya terdiri daripada ion, yang mungkin sebahagiannya menerangkan kekonduksian tinggi dalam ampaian A. esculenta berbanding dengan dua spesies yang lain.

Keputusan menunjukkan bahawa pH dalam ampaian U. lactuca adalah lebih rendah daripada dua spesies lain, tetapi tiada kesan jelas daripada jenis pengekstrakan dihasilkan. Suhu telah dinaikkan daripada 22 ± 1◦C sebelum rawatan, kepada 95 ◦C oleh HW (untuk semua spesies), kepada36.0 ± 1.0 ◦C, 46.3 ± 0. 6 ◦C dan 51.0 ± 1◦C oleh PEF, dalam A. esculenta, P. palmata dan U. lactucasuspensions. Trend yang sama dilihat untuk kumpulan yang dirawat dengan PEF, yang kemudiannya dipanaskan lagi oleh HW. Kenaikan suhu disebabkan oleh penukaran tenaga elektrik kepada tenaga haba (pemanasan ohmik), dalam ampaian semasa rawatan PEF. Tahap peningkatan suhu diketahui adalah berkadaran dengan arus yang dikenakan tetapi dalam perkadaran songsang dengan kekonduksian. Ini boleh menjelaskan mengapa P. palmata danU. lactuca mencapai suhu yang lebih tinggi semasa rawatan PEF walaupun ia mempunyai konduktiviti yang lebih rendah daripada A. esculenta.

2.2. Spektrum Penyerapan UV-VIS Ekstrak Rumpai Laut Iceland

Rumpai laut yang dikaji berbeza dalam profil spektrum (Rajah 1), menunjukkan bahawa komposisi dan potensi penyerapan UV berbeza antara spesies. Walau bagaimanapun, jenis teknik pengekstrakan tidak menunjukkan kesan yang luar biasa dalam spektrum penyerapan UV; ekstrak rumpai laut menunjukkan profil penyerapan yang sama tanpa mengira kaedah pengekstrakan.

Spektrum penyerapan UV alga hijau U. lactuca menunjukkan puncak yang ketara dalam julat UV-B (280–320 nm) (Rajah 1a), manakala ekstrak daripada alga perang A. esculenta menunjukkan tiada pembentukan zon penyerapan yang jelas (Rajah 1c ). Walau bagaimanapun, keputusan menunjukkan penyerapan yang lebih kuat pada 220 nm dalam ekstrak A. esculenta berbanding U. lactuca dan P. palmatayang dianggap hasil daripada kandungan sebatian fenolik yang tinggi dalam A. esculenta (Jadual 2). Penyerapan maksimum dalam julat ini telah dikaitkan dengan hubungan antara sebatian fenolik dan alginat. Hubungan ini dianggap dapat mengekalkan keupayaan penyerapan UV sebatian fenolik dari semasa ke semasa [40].

Penemuan yang lebih menarik ialah keputusan yang diperoleh untuk ekstrak alga merah, P. palmata menyerap sebahagian sinaran UV-A (320–400 nm). Adalah diketahui bahawa alga merah mengumpul sebatian fotoprotektif dengan keupayaan penyerapan sinaran ultraungu seperti asid amino (MAAs) seperti mikosporin, yang menyerap dalam kawasan UV khusus ini [41]. P. palmata cemerlang dalam spektrum penyerapan UV dengan puncak yang menonjol antara 320 dan 340 nm selaras dengan kehadiran MAA yang menyerap dalam julat ini [42], seperti palythinol (penyerapan puncak pada 332 nm), asterina-330 (puncak penyerapan 330 nm), porfira-334 (penyerapan puncak pada 334 nm) dan lain-lain [43]. Oleh kerana keadaan pengekstrakan, seperti jenis pelarut, diketahui mempengaruhi kecekapan pengekstrakan, keputusan dalam kajian ini dibandingkan dengan kajian terdahulu mengenai pengekstrakan air MAAs dengan P. palmata. Dalam kajian ini, puncak maksimum penyerapan dikesan pada 325 hingga 330 nm [44], seperti dalam kajian ini. Oleh itu, adalah mungkin untuk mengandaikan bahawa puncak yang diperhatikan antara 320 dan 340 nm mungkin disebabkan oleh kehadiran MAA.

Perbezaan dalam spektrum penyerapan antara 350 dan 700 nm telah dijelaskan oleh kehadiran pigmen aksesori yang berbeza dalam fotosistem masing-masing makroalga hijau, coklat dan merah, klorofil-b (450-500 nm), fucoxanthin (400-500 nm) dan phycoerythrin. (600–650 nm) masing-masing [45]. Kepekatan sebatian larut air dalam ekstrak mempunyai kesan yang lebih kuat. Akibatnya, corak yang mencerminkan perbezaan pigmen antara spesies alga tidak jelas dalam kajian ini.

2.3. Jumlah Kandungan Fenolik, Flavonoid dan Karbohidrat Ekstrak Rumpai Laut Iceland

Jumlah kandungan fenolik dalamrumpai lauts berjulat dari 1592 hingga 9368 µg GAE/g dw(Jadual 2). Alga perang A. esculenta menunjukkan kuantiti tertinggi (p < 0.05)="" fenolik="" (nilai="" min="" 8869.7="" µg="" gae/g="" dw),="" diikuti="" oleh="" p.="" palmata="" (nilai="" min1806.2="" µg="" gae/g="" dw)="" dan="" u.="" lactuca="" (nilai="" min="" 1750.7="" µg="" gae/g="" dw)="" (tiada="" perbezaan="" yang="" ketara="" antara="" ekstrak="" p.="" palmata="" dan="" u.="" lactuca)).="" bagi="" setiap="" spesies="" rumpai="" laut,="" kandungan="" polifenol="" tidak="" berbeza="" antara="" kaedah="" pengekstrakan="" kecuali="" u.="" lactuca,="" yang="" mana="" keputusan="" menunjukkan="" bahawa="" hw="" adalah="" teknik="" yang="" paling="" cekap="" (p="">< 0.05).="" walau="" bagaimanapun,="" kelebihan="" pef="" termasuk="" sifat="" bukan="" haba,="" masa="" pengekstrakan="" yang="" lebih="" pendek="" (10="" min="" vs.="" 45="" min)="" dan="" proses="" hijau="" harus="">

Di antara tiga kumpulan alga, makroalga coklat mengandungi bilangan polifenol yang lebih tinggi daripada makroalga merah dan hijau. Keputusan adalah bersetuju dengan kajian awal [46,47] yang melaporkan bahawa spesies alga coklat (cth, A. esculenta dan Saccharina latissma) mempunyai kandungan fenolik yang lebih tinggi daripada spesies merah (P. palmata) dan hijau (cth, U. lactuca). Ini disokong oleh pengarang lain [48] yang menyimpulkan bahawa kandungan polifenol min adalah khusus spesies (A. esculenta > S. latissma > P. palmata) dan kandungan fenolik adalah lebih daripada tiga kali lebih tinggi dalam A. esculenta berbanding spesies lain ( A. esculenta: 37 mgphloroglucinol setara (PGE)/g dw; S. latissma: 8 mg PGE/g dw; P. palmata: 5 mgGAE/g dw). Tambahan pula, dalam kajian yang sama, penulis melaporkan bahawa kandungan polifenol berbeza mengikut musim, manakala variasi spatial (alga dituai di Norway, Perancis dan Iceland) menunjukkan kesan kecil. Sebagai contoh, Gager et al. (2020) mendapati terdapat kesan ketara variasi bermusim dalam kandungan polifenol A. esculenta, dengan lebih daripada 300 mg GAE/g DW pada musim luruh berbanding di bawah 20 mg GAE/g DW masa inspring. Phlorotannin daripada tujuh rumpai laut perang yang dituai secara komersial di Brit tany (Perancis) dikesan oleh 1 H NMR dan ujian in vitro: variasi temporal dan potensi pengevalan dalam aplikasi kosmetik. Sampel kami dikumpul pada bulan Julai (U. lactuca dan A. esculenta) dan pada bulan November (P. palmata). Dalam kajian Roleda [48], kandungan purata dalam A. esculenta dari Trondheim, Norway (tidak dikumpulkan di Iceland) pada musim panas ialah 40 mg PGE/g dw dan P. palmata dari Iceland tetapi 4 mg GAE/g dw pada musim luruh. Nilai yang lebih tinggi yang dilaporkan berbanding dengan kajian kami boleh dijelaskan oleh media pengekstrakan yang digunakan (80:20 aseton: air), berkemungkinan menghasilkan hasil pengekstrakan yang lebih tinggi. Kandungan polifenol yang lebih tinggi juga didapati untuk ekstrak A. esculenta menggunakan campuran etanol dan air (50:50) dengan ultrasound [49]. Walau bagaimanapun, menggunakan medium pengekstrakan yang sama dan pengekstrakan pelarut klasik, A. esculenta dilaporkan mengandungi 44.1 mg GAE/100 g dw ekstrak tak berair [50], agak serupa dengan yang diperhatikan dalam kajian ini.

Purata kandungan flavonoid adalah khusus spesies (A. esculenta > U. lactuca > P. palmata;(p < 0.{{10}}5) (Jadual 2). Jumlah tertinggi bagi flavonoid diperhatikan untuk ekstrak A. esculenta (nilai min 12098.7 µg QE/g dw), manakala kandungan yang lebih rendah didapati untuk U. lactuca (nilai min 4152.4 µg QE/g dw), dan kandungan minimum ditentukan untuk ekstrak P. palmata( nilai min 905.8 µg QE/g dw).Sama seperti tingkah laku yang ditemui untuk jumlah kandungan fenolik, jenis teknologi pengekstrakan tidak mempunyai kesan yang ketara terhadap kandungan flavonoid (p > 0.05), kecuali U. lactuca. Keputusan menunjukkan bahawa HW dan gabungan kedua-dua teknik (PEF tambah HW) adalah teknik yang paling berkesan untuk pengekstrakan flavonoid dalam U. lactuca (p < 0.05).

Terdapat banyak kajian tentang kandungan flavonoid dalam tumbuhan darat, tetapi kajian kandungan flavonoid dalam alga adalah terhad [51] dan terutamanya dalam spesies yang dikaji dalam kerja sekarang. Iaitu kajian Ummat et al. [49] melaporkan bahawa pengekstrakan dengan bantuan ultrasound meningkatkan pemulihan flavonoid dalam semua 11rumpai lauts disiasat (termasuk A. esculenta)berbanding dengan pengekstrakan pelarut konvensional menggunakan campuran 50 peratus etanol. Dalam kajian lain, flavonoid dikira dalam ekstrak metanol empat spesies Ulva (Ulva clathrata, Ulva linza, Ulva flexuosa dan Ulva intestinalis) yang ditanam di bahagian berlainan pantai utara Teluk Parsi di selatan Iran; kandungan flavonoid ekstrak alga berbeza dari 8 hingga 33 mg RE/g dw [52]. Walau bagaimanapun, kajian terdahulu oleh kumpulan penyelidik yang sama mendapati perubahan ketara dalam juzuk kimia dengan perubahan musim dan keadaan persekitaran [53]. Oleh itu, agak sukar untuk mendapatkan gambaran keseluruhan penuh tentang bibliografi sebatian bioaktif inirumpai lauts, disebabkan oleh kekurangan penyelidikan yang diterbitkan, tetapi juga kerana perubahan dalam kandungan flavonoid yang dipengaruhi oleh keadaan pertumbuhan dan lokasi geografi.

Mean carbohydrate content of produced extracts was also species-specific (P. palmata >U. lactuca > A. esculenta; p < 0.05)="" (jadual="" 2).="" kandungan="" antara="" 44.8="" hingga="" 510="" mg="" glue/gdw="" bergantung="" kepada="" spesies="" alga.="" rumpai="" laut="" mengandungi="" sejumlah="" besar="" polisakarida="" dengan="" fungsi="" penting="" untuk="" sel="" makroalga="" termasuk="" sokongan="" struktur="" dan="" penyimpanan="" tenaga.="" sebagai="" contoh,="" bahagian="" utama="" dinding="" sel="" rumpai="" laut="" merah="" dan="" coklat="" diwakili="" oleh="" galaktan="" sulfat,="" yang="" dikenali="" sebagai="" agar,="" alginat,="" dan="" karagenan="" [54].="" redalgae="" p.="" palmata="" menunjukkan="" jumlah="" kandungan="" karbohidrat="" tertinggi="" (nilai="" min="" 441="" mgglue/g="" dw).="" keputusan="" adalah="" bersetuju="" dengan="" kajian="" terdahulu="" yang="" melaporkan="" kepekatan="" polisakarida="" tertinggi="" dalam="" spesies="" palmaria="" [55].="" selain="" itu,="" mutripah="" et="" al.="" [56]memerihalkan="" jumlah="" kandungan="" karbohidrat="" p.="" palmata="" sebanyak="" 469="" mg/g="" rumpai="" laut="" kering,="" secara="" relatifnya="" serupa="" dengan="" yang="" diperhatikan="" dalam="" kajian="">

Makroalga hijau U. lactuca menunjukkan kandungan sehingga 249.5 mg GluE/g dwbergantung kepada teknik pengekstrakan yang digunakan (Jadual 2). Berdasarkan literatur, U. lactucahas selulosa larut air dan tidak larut sepadan dengan polisakarida struktur dengan komponen utama yang dipanggil ulvan, yang menyumbang daripada 9 hingga 36 peratus berat kering biojisim [57]. Ulvan terutamanya terdiri daripada rhamnose sulfat, asid uronik (glucuronicacid dan asid iduronik) dan xylose. Disebabkan sifat kutubnya, keterlarutan larutan tak berair ulvan dipertingkatkan dengan pengekstrakan pada suhu tinggi (80–90 ◦C) [58]. Suhu pengekstrakan boleh menjadi sebab mengapa jumlah kandungan karbohidrat ekstrak U. laktuka yang dihasilkan oleh pengekstrakan air panas tradisional dan gabungan kedua-dua kaedah (PEF tambah HW) adalah lebih tinggi (p < 0.05)="" daripada="" kandungan="" yang="" dicapai="" hanya="" menggunakan="">

Sebaliknya, pengarang lain menonjolkan kepentingan variasi bermusim dalam kandungan polisakarida. Sebagai contoh, Schiener et al., mendakwa mengenal pasti variasi bermusim dan meramalkan masa penuaian terbaik untuk rumpai laut. Analisis komposisi bermusim A. esculenta menunjukkan bahawa nilai maksimum karbohidrat bertepatan dengan pengurangan kepekatan protein, abu, polifenol dan lembapan [39]. Menurut pengarang, hubungan ini, yang berbeza antara musim dan spesies, boleh digunakan oleh industri untuk memaksimumkan hasil yang disasarkan.rumpai lautkomponen.

2.4. Kapasiti Antioksidan Ekstrak Rumpai Laut Iceland

A. esculenta mempunyai aktiviti penghapusan DPPH yang paling kuat di kalangan ekstrak kasar ketiga-tiga spesies alga (p < {{0}}.05),="" dengan="" kesan="" penghapusan="" lebih="" tinggi="" daripada="" 90="" peratus="" (jadual="" 3).="" berbanding="" dengan="" yang="" berbeza="" larutan="" piawai,="" a.="" esculenta="" menunjukkan="" aktiviti="" penghapusan="" yang="" setanding="" sebagai="" 100="" µg/ml="" asid="" askorbik="" (87.9="" peratus="" ),="" asid="" gallic="" (91.0="" peratus="" )="" dan="" -tokoferol(87.9="" peratus).="" keputusan="" kami="" adalah="" bersetuju="" dengan="" kajian="" terbaru="" [50],="" yang="" juga="" melaporkan="">antioksidanaktiviti ekstrak A. esculenta. Anehnya, tiada perbezaan yang ketaraantioksidanaktiviti telah diperhatikan antara kaedah pengekstrakan berbeza yang diuji(p > 0.05). Ekstrak PEF dijangka menunjukkan nilai antioksidan yang lebih baik daripada ekstrak yang dihasilkan dengan pengekstrakan tradisional panas kerana kajian lain telah menunjukkan bahawa teknik hijau (seperti pengekstrakan berbantukan gelombang mikro atau pengekstrakan enzim) secara berkesan dapat mengelakkan penguraian sebatian bioaktif, mempamerkan aktiviti antioksidan yang lebih tinggi [59]. ,60].

Keupayaanrumpai lautekstrak untuk mengurangkan ion ferik (Fe3 tambah) kepada ferus (Fe2 tambah) dan kebolehan untuk menghilangkan radikal ABTS juga telah dikaji, mengikut kaedah FRAP dan ABTS, masing-masing. Keputusan FRAP menunjukkan arah aliran yang sama dengan DPPH, menunjukkan A. esculenta mempunyai keupayaan paling kuat untuk mengurangkan ion ferik (Fe3 tambah ) kepada ferus (Fe2 tambah ) antara ekstrak mentah tiga spesies alga (p < 0.{{6}="" }5).="" walau="" bagaimanapun,="" tingkah="" laku="" yang="" berbeza="" ditemui="" untuk="" abts.="" ekstrak="" semua="" rumpai="" laut="" menunjukkan="" kebolehan="" yang="" sama="" untuk="" mengais="" radikal="" abts="" (p=""> 0.05), menunjukkan bahawa spesies ini mungkin mengandungi beberapa sebatian cekap yang bertanggungjawab untuk aktiviti penghapusannya.

Secara amnya, alga coklat diketahui mempunyai kehadiran yang lebih tinggiantioksidanberpotensi berbanding keluarga merah dan hijau [61]. Keputusan kami juga menunjukkan bahawa ekstrak akueus daripadaA. esculenta mempamerkan aktiviti antioksidan yang berkesan berkaitan dengan penghapusan radikal bebas dan mengurangkan kuasa, menunjukkan bahawa A. esculenta berpotensi menjadi sumber untuk antioksidan semula jadi. Aktiviti antioksidan yang tinggi diperhatikan untuk ekstrak A. esculenta boleh dikaitkan dengan kandungan tinggi dalam sebatian fenolik yang ditentukan dalam ekstrak alga perang. Dalam banyak kajian, yangantioksidanaktiviti ekstrak alga telah dikaitkan dengan sebatian fenolik, menunjukkan korelasi positif antara kandungan fenolik dan kapasiti penghapusan kebanyakannya dengan DPPH [62,63]. Keputusan korelasi yang sama ditemui dalam kajian semasa untuk ekstrak A. esculenta (lihat perbincangan yang lebih baik dalam Bahagian 2.6. Korelasi antara sebatian kimia dan sifat bioaktif).

2.5. Aktiviti Perencatan Enzimatik Ekstrak Rumpai Laut Iceland

bahasa Icelandrumpai lautEkstrak s mempamerkan kesan perencatan positif terhadap semua enzim yang diuji (Jadual 4), membuka jalan baharu untuk eksploitasi perencat enzimatik semula jadi daripada sumber alga. Untuk pengetahuan terbaik kami, ini adalah kali pertama aktiviti perencatan enzimatik Icelandrumpai lautekstrak yang dihasilkan oleh PEF telah diuji.

2.5.1. Aktiviti Perencatan Kolagenase

Ekstrak A. esculenta menunjukkan perencatan kolagenase positif antara 68 hingga 91 peratus, manakala ekstrak P. palmaria dan U. lactuca mempamerkan aktiviti perencatan yang tidak ketara terhadap kolagenase (Jadual 4). Ekstrak air panas A. esculenta mempamerkan 71.1 peratus aktiviti perencatan kolagenase, yang lebih tinggi daripada larutan standard epigallocatechin-3-gallate (EGCG) (63.2 peratus )dan setanding dengan standard positif yang disediakan oleh kit enzimatik komersial (74.9 peratus). mendapati bahawa ekstrak A. esculenta yang dihasilkan oleh PEF menunjukkan perencatan acollagenase sebanyak 91 peratus , menunjukkan aktiviti yang lebih tinggi daripada perencat yang disediakan oleh kit komersial. Perlu ditekankan bahawa aktiviti ini hanya diperhatikan dalam ekstrak air yang dihasilkan oleh PEF dan bukan oleh gabungan PEF ditambah HW. Tingkah laku ini boleh dijelaskan oleh kemungkinan bahawa proses air panas boleh memberi kesan negatif kepada sebatian yang bertanggungjawab untuk menghalang aktiviti kolagenase. Walau bagaimanapun, kajian tambahan diperlukan untuk menjelaskan keputusan ini kerana kerumitan ekstrak alga mentah. Kumpulan penyelidikan yang disebutkan di atas kini sedang berusaha untuk mengenal pasti molekul perencatan dalam ekstrak A. esculenta untuk lebih memahami kesan positif yang dihasilkan oleh PEF ini.

Keputusan mengenai perencatan kolagenase oleh ekstrak A. esculenta adalah selaras dengan data sebelumnya, di mana A. esculenta digunakan dalam ekstrak komersial kerana kesan antipenuaannya. Degradasi kolagen berlaku dengan penuaan akibat aktiviti kolagenase, mengakibatkan kedutan pada kulit. Perencatan kolagenase oleh sebatian semulajadi adalah peluang menarik untuk produk anti-penuaan. Sebagai contoh, SEPPIC, pembekal bahan untuk industri kosmetik, menawarkan ekstrak lipofilik A. esculenta (Kalpariane® AD) [64].

2.5.2. Aktiviti Perencatan Elastase

Hanya ekstrak mentah A. esculenta menghalang elastase, mempamerkan aktiviti lebih tinggi daripada 70 peratus perencatan (Jadual 4). Walau bagaimanapun, aktiviti antielastase ekstrak A. esculenta tidak berbeza secara statistik antara kaedah pengekstrakan (p > 0.05). Berbanding dengan larutan kuersetin, perencat elastase terkenal yang menunjukkan perencatan 100 peratus pada 1 mM dan 58.7 peratus pada 0.5 mM, prestasi ekstrak daripada A. esculenta adalah tinggi.

Elastase ialah enzim proteinase yang boleh mengurangkan elastin dengan memecahkan ikatan peptida tertentu. Akibatnya, perencatan aktiviti elastase dalam lapisan dermis boleh digunakan untuk mengekalkan keanjalan kulit [65]. Banyak ekstrak tumbuhan telah dikenal pasti sebagai elastaseinhibitor [17]; walau bagaimanapun, beberapa penyiasatan telah dijalankan ke atas perencatan elastase daripada sumber alga. Menurut data kesusasteraan, polifenol yang diekstrak daripada tumbuhan dikenali sebagai penghambat elastase dan hyaluronidase yang kuat [66]. Satu kajian baru-baru ini melaporkan bahawa phlorotannins, jenis tanin dalam alga perang, ekstrak kelp laut Eisenia bicyclis dan alga coklat Ecklonia cava, memberi manfaat kepada kulit dengan mengurangkan aktiviti elastase dengan ketara [67]. Ekstrak A. esculenta yang dihasilkan dalam kajian ini menunjukkan nilai TPC dan TFC tertinggi dalam perbandingan dengan spesies lain yang dikaji (Jadual 4), jadi ini boleh menjadi sebab mengapa ekstrak berair daripada P. palmaria dan U. lactuca tidak menunjukkan aktiviti anti-elastase. Untuk mengesahkan hipotesis ini, analisis korelasi Pearson telah dijalankan, mencadangkan bahawa aktiviti anti-enzimatik berkorelasi positif dengan kandungan bahan fenolik (lihat perbincangan lanjut dalam Bahagian 2.6. Korelasi antara sebatian kimia dan sifat bioaktif).

2.5.3. Aktiviti Perencatan Tirosinase

Ekstrak A. esculenta menunjukkan positiftyrosinaseperencatan lebih tinggi daripada 90 peratus untuk semua kaedah pengekstrakan yang digunakan, manakala ekstrak P. palmaria dan U. lactuca tidak menunjukkan kesan perencatan tyrosinase (Jadual 4). Walau bagaimanapun, aktiviti anti-tirosinase ekstrak A. esculenta tidak berbeza (p < 0.05)="" dengan="" kaedah="" pengekstrakan.="" membandingkan="" kesan="" ekstrak="" a.="" esculenta="" dengan="" larutan="" kuersetin="" yang="" diuji,="" ekstrak="" kasar="" alga="" perang="" menunjukkan="" aktiviti="" perencatan="" yang="" lebih="" baik="" daripada="" larutan="" ini="" (masing-masing="" 88="" dan="" 75="" peratus="" untuk="" larutan="" kuersetin="" 0.5="" dan="" 1="" mm).="" berdasarkan="" literatur,="" aktiviti="" anti-tirosinase="" tumbuhan,="" bakteria="" dan="" kulat="" telah="" dilaporkan="" oleh="" beberapa="" penyelidik="" [68].="" walau="" bagaimanapun,="" walaupun="" kajian="" berbeza="" mencadangkan="" bahawa="" sebatian="" bioaktif="" yang="" diperoleh="" daripada="" alga="" marin="" mempunyai="" potensi="" yang="" baik="" untuk="" digunakan="" sebagai="" agen="" pemutihan="" kulit="" [13],="" ini="" masih="" merupakan="" domain="" yang="" belum="" diterokai="" dan="" hanya="" beberapa="" kajian="" telah="" dijalankan.="" kebanyakan="" kajian="" yang="" dilakukan="" di="" kawasan="" ini="" telah="" tertumpu="" kepada="" alga="" coklat,="" bersetuju="" dengan="" keputusan="" kajian="" ini="" di="" mana="" a.="" esculentaextracts="" mempamerkan="" aktiviti="" anti-tirosinase="" terbaik.="" sebagai="" contoh,="" derivatif="" phloroglucinol="" dan="" phlorotanin,="" metabolit="" sekunder="" biasa="" yang="" terdapat="" dalam="" alga="" coklat,="" telah="" menunjukkan="" aktiviti="" perencatan="" terhadap="" tyrosinase="" kerana="" keupayaannya="" untuk="" mengelat="" kuprum="" [69].="" dalam="" kajian="" terbaru,="" ekstrak="" alga="" coklat="" lessonia="" trabeculate="" yang="" dihasilkan="" oleh="" pengekstrakan="" dibantu="" gelombang="" mikro="" menghalang="" aktiviti="" tyrosinase="" sebanyak="" 33.73="" peratus="" [60].="" dalam="" kajian="" lain,="" ekstrak="" alga="" coklat="" turbinaria="" conoides="" menunjukkan="" aktiviti="">antioksidandantyrosinaseperencat, bagaimanapun, dalam kes ini, etanol digunakan sebagai pelarut [70]. Korelasi yang signifikan antara potensi perencatan polifenol yang diekstrak daripada tumbuhan pada cendawantyrosinasetelah dilaporkan dalam kajian terdahulu [68]. Begitu juga, keputusan kajian ini menunjukkan bahawa aktiviti perencatan terhadap tyrosinase berkorelasi positif dengan kandungan flavonoid dan fenolik (lihat Bahagian 2.6. Korelasi antara sebatian kimia dan sifat bioaktif).

Tyrosinase memainkan peranan penting dalam biosintesis pigmen melanin dalam kulit. Melanin bertanggungjawab untuk perlindungan terhadap penyinaran ultraviolet yang berbahaya, yang boleh menyebabkan beberapa keadaan patologi [71]. Di samping itu, ia boleh menimbulkan masalah estetik apabila melanin terkumpul sebagai bintik hiperpigmen [72]. Oleh itu, menggabungkan tyrosinaseinhibitors dalam produk kosmetik boleh menjadi menarik kerana kesan pemutihan dan atau pencerahan.

cistanche boleh menghalang tyrosinase

2.5.4. Aktiviti Perencatan Hyaluronidase

Semuarumpai lautekstrak mempamerkan aktiviti anti-hialuronidase yang sangat tinggi (Jadual 4), menunjukkan keputusan yang setanding dengan larutan asid tannik (perencat hyaluronidase yang terkenal). Khususnya, ekstrak A. esculenta menunjukkan 100 peratus perencatan untuk semua kaedah yang diuji. Selain itu, ekstrak U. lactuca mempamerkan aktiviti lebih tinggi daripada 90 peratus perencatan, di mana perencatan ekstrak yang dihasilkan oleh PEF (96.8 peratus ) dan gabungan PEF ditambah HW (97.3 peratus ) adalah lebih tinggi daripada perencatan yang dihasilkan oleh kaedah air panas tradisional 93.4 peratus ) (p < 0.05).="" semua="" ekstrak="" p.="" palmaria="" mempamerkan="" aktiviti="" yang="" sama="" (p="">< 0.05),="" perencatan="" ekstrak="" yang="" dihasilkan="" oleh="" pef="" adalah="" (91.9="" peratus="" )="" dan="" gabungan="" pef="" ditambah="" hw(89.5="" peratus)="" dan="" kaedah="" air="" panas="" tradisional="" (91.8="">

Penulis lain juga menerangkan aktiviti anti-hyaluronidase yang berbezarumpai lauts, terutamanya untuk ekstrak yang kaya dengan phlorotanin daripada alga perang [73,74]. Walau bagaimanapun, sepanjang pengetahuan kami, ini adalah kali pertama aktiviti perencatan hyaluronidase ekstrak P. palmata dan U. lactuca yang dihasilkan oleh PEF telah dilaporkan.

Asid hyaluronik adalah komponen utama dermis, di mana ia terlibat dalam pembaikan tisu, ia rosak dengan penuaan, menyebabkan kedutan dan kehilangan ketegasan kulit. Dalam pengertian ini, perencat hyaluronidase meningkatkan tahap asid hyaluronik matriks ekstraselular kulit untuk penambahbaikan penampilan kulit muka yang semakin tua [13]. Oleh itu, hasil kajian ini mungkin membuka jalan baru untuk eksploitasi perencat hyaluronidase semula jadi daripada sumber alga yang berpotensi digunakan dalam produk kosmetik.

Secara ringkasnya, data yang dikumpul membolehkan kami membuat kesimpulan bahawa ekstrak A. esculenta mempamerkan keseluruhan aktiviti perencatan yang lebih baik daripada P. palmaria dan U. lactuca terhadap enzim yang diuji. Oleh itu, sebagai spesies rumpai laut yang paling menjanjikan dengan aktiviti anti-enzimatik yang sangat baik dan oleh itu ia dipilih untuk kajian lanjut di makmal kami. Walaupun ekstrak mentah daripada A. esculenta kelihatan sebagai calon yang baik dalam eksperimen in vitro, kajian lanjut perlu dijalankan untuk menjelaskan identiti metabolit yang bertanggungjawab untuk kesan biologi ini.

ekstrak cistanche: anti-pengoksidaan

2.6. Korelasi antara Sebatian Kimia dan Sifat Bioaktif

Keputusan daripada analisis komponen utama (PCA), menunjukkan bahawa pemisahan utama kumpulan ditakrifkan oleh PC1 dan PC2, yang masing-masing menyumbang 71.9 peratus daripada dan 14.5 peratus daripada varians dalam data (Rajah 2). Ekstrak A. esculenta dicirikan oleh kandungan flavonoid dan sebatian fenolik yang lebih tinggi, kesan perencatan pada enzim (kolagenase, tyrosinase dan elastase), dan nilai DPPH dan FRAP, berbanding spesies lain, P. palmata dan U. lactuca. Sebaliknya, A. esculenta mempunyai kandungan karbohidrat yang lebih rendah, terutamanya berbanding P. palmata (yang terletak di bahagian bertentangan PC1). Variasi dalam data sepanjang PC2 adalah berkaitan terutamanya dengan perencatan ABTS dan hyaluronidase. Seperti yang ditunjukkan oleh lokasi pada plot, P. palmata mempunyai korelasi yang lebih kuat kepada ABTS manakala U. lactuca lebih berkaitan dengan kesan perencatan hyaluronidase, berbanding kedua-dua spesies ini.

Korelasi positif yang tinggi dan ketara antara TPC, TFC, DPPH, FRAP, dan kesan perencatan pada kolagenase, elastase dantyrosinasetelah ditunjukkan oleh analisis Pearsoncorrelation (Jadual 5).

Ini adalah dalam persetujuan dengan kajian terdahulu, melaporkan bahawa sebatian fenolik (termasuk flavonoid) adalah penyumbang utama kepada aktiviti antioksidan pelbagairumpai laut[75–77]. Aktiviti antioksidan yang tinggi bagi ekstrak daripada makroalga coklat telah dikaitkan dengan kumpulan tertentu polifenol, phlorotanin, dan struktur molekulnya yang unik. Phlorotannis daripada alga coklat dilaporkan mempunyai sehingga lapan gelang fenol yang saling berkaitan yang bertindak sebagai perangkap elektron [78,79]. Adalah dijangkakan bahawa ABT akan berkait dengan TPC, lain-lainantioksidanparameter. Sebab yang mungkin adalah bahawa kaedah adalah berdasarkan keadaan tindak balas yang berbeza dan kereaktifan berbeza dari segi masa dan julat komponen. Sebagai contoh, reagen ABTS bertindak balas dengan julat yang lebih luas daripadaantioksidandaripada radikal DPPH [80]. Sebaliknya, salah satu had yang disebut untuk ABTS ialah tindak balas yang panjang dan masa tindak balas umum mungkin tidak membenarkan mencapai titik akhir.

Keputusan menunjukkan bahawa terdapat korelasi positif TPC dan TFC yang tinggi terhadap aktiviti perencatan kolagenase, elastase dan tyrosinase ({{0}}.93–0.99), manakala hubungan dengan perencatan. hyaluronidase tidak begitu kuat (r=0.42 dan 0.54, masing-masing). Ini menunjukkan bahawa komponen lain mungkin telah menyumbang kepada kesan perencatan ekstrak tersebut. Kajian lain telah melaporkan bahawa polisakarida mempunyai aktiviti perencatan hyaluronidase, contohnya, asid alginik dalam alga coklat [81,82]. Kajian lanjut mengenai komposisi kimia spesies makroalga untuk kesan sebatian terpencil ke atas enzim diperlukan untuk menilai sumbangan setiap komponen kimia kerana dalam kajian ini tumpuan diberikan kepada ekstrak mentah.

Penemuan ini adalah selaras dengan kajian terdahulu, menyatakan bahawa komposisi kimia dan tahap bioaktiviti ekstrak berbeza dengan ketara antara tiga keturunan (alga merah, hijau dan coklat) dan antara spesies berbeza yang tergolong dalam filumand yang sama dipengaruhi oleh umur dan tisu. taip. Tambahan pula, komposisi dan ciri bergantung kepada banyak faktor persekitaran yang mempengaruhi taburan dan pertumbuhan makroalga. Contohnya, cahaya (sinar UV), suhu, ketersediaan nutrien, pendedahan kepada udara, gerakan air, pendedahan gelombang dan kemasinan. Suhu telah digambarkan sebagai faktor yang mempunyai kesan paling kuat terhadap pembentukan pigmen dan kepekatan nutrien, kemasinan, dan sinaran UV sebagai faktor yang mempengaruhi kepekatan TPC [83].

Taburan spesies makroalga berbeza berbeza mengikut kedalaman air. Kedudukan yang lebih tinggi di pantai dalam zon intertidal atau litoral adalah lebih tertekan kerana spesies yang tumbuh di sana, mesti menahan pelbagai perubahan dalam faktor abiotik akibat perubahan pasang surut. Contohnya, kesan pengeringan udara, sinaran suria yang tinggi (pada air surut), perubahan dalam kemasinan dan suhu dan, dalam keadaan suhu udara rendah, termasuk pembekuan. Di bawah tanda air yang rendah, kedalaman yang semakin meningkat mengakibatkan penurunan intensiti cahaya yang sangat cepat dan kurang pendedahan kepada sinaran.

Alga yang tumbuh dalam julat pasang surut mempunyai sensitiviti yang lebih rendah kepada Sinaran UV dan pulih dengan lebih cepat daripada tekanan suria. Manakala alga yang tumbuh di zon sublittoral lebih sensitif kepada sinaran UV dan mempunyai pemulihan yang lebih rendah daripada tekanan suria [84]. Pada masa yang sama, lajur air memberikan perlindungan. Dalam kajian ini pendedahan kepada cahaya matahari mungkin lebih kuat untuk P. palmata, berbanding dengan spesies lain. Kajian lain telah menunjukkan bahawa pembentukan MAA secara langsung berkaitan dengan cahaya matahari [85], melindungi organisma daripada sinaran UV-A dan UV-B. Selain itu, ditunjukkan bahawa jumlah MAA tertentu menurun dengan peningkatan kedalaman pengumpulan. Kelp seperti A. esculenta, diketahui tumbuh di zon sublittoral atas tetapi juga memanjang ke celahan pasang surut terendah tepat di atas tera air rendah. Bermaksud lajur air memberikan perlindungan yang lebih kuat berbanding P. palmata. Selain itu, ciri morfologi adalah berbeza, bilah A. esculenta lebih tebal berbanding dua spesies yang lain. U. lactuca, tumbuh terutamanya di sublittoral intertidaland mampu berfotosintesis dan tumbuh di bawah sinaran yang sangat rendah. Pendedahan kepada cahaya UVB telah dinyatakan untuk mempercepatkan pemulihan parameter fotosintesis U. lactuca daripada kesan negatif cahaya UVA. Ia lebih kecil, lebih ringkas dalam struktur dan lebih pendek (3 bulan) daripada kedua-dua A. esculenta (5–7 tahun) dan P. palmata yang mempunyai pertumbuhan baru setiap tahun.

Secara ringkasnya, andaian boleh dibuat bahawa perbezaan utama dalam sifat ekstrak adalah kepada variasi dalam jangka hayat, ciri morfologi dan keadaan pertumbuhan spesies alga.

3. Bahan dan Kaedah

3.1. Bahan

bahasa Icelandrumpai lauts U. lactuca (alga hijau), A. esculenta (alga coklat) dan P. palmata (alga merah) telah disediakan oleh Icelandic Blue Mussel danRumpai laut, yang menuai rumpai laut di Breidafjordur (West-Iceland). Selepas menuai rumpai laut telah dikeringkan (kira-kira 90 peratus bahan kering), dikisar dan dihantar dalam pek vakum. Sampel disimpan di tempat yang kering dan gelap pada suhu bilik sehingga digunakan.

Tirosinasedaripada cendawan, L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA), elastase daripada pankreas babi, asid askorbik, N-Succinyl-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilide (AAAPVN), hyaluronidase daripada testis lembu , quercetin, -tokoferol, asid tannic, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), 2,4,6-Tripyridyl-s-Triazine (TPTZ), Trolox, Folin-Ciocalteu reagen, asid gallik dan kit ujian kolorimetrik aktiviti kolagenase (MAK293) telah dibeli daripada Sigma-Aldrich Co. (St. Louis, MO, Amerika Syarikat). Garam natrium asid hyaluronik dibeli daripadaMakingCosmetics (Redmond, WA, USA). Semua bahan kimia dan reagen lain yang digunakan adalah gred analitik dan diperoleh daripada VWR International, LLC. Air ternyahion (Elix® Essential, Merck, Darmstadt, Jerman) telah digunakan untuk pengekstrakan dan penyediaan penyelesaian berasaskan air.

3.2. Reka bentuk eksperimen

Reka bentuk faktor digunakan untuk menilai kesan spesies rumpai laut Iceland (U. lactuca, A. esculenta, P. palmata) dan rawatan pengekstrakan (pengekstrak air panas (HW, 95 ◦C)), pengekstrakan berbantu PE (PEF) dan gabungan kedua-duanya. teknik (PEF tambah HW), pada komposisi ekstrak dan bioaktiviti (Jadual 6). Pengekstrakan dilakukan dalam tiga kali ganda untuk setiap kumpulan dan setiap ulangan ekstrak dianalisis dalam tiga kali ganda.

3.3. Pengekstrakan Bioaktif daripada Rumpai Laut Iceland

Eksploitasi biojisim makroalga pada tahap yang berbeza telah mendorong saintis untuk meneroka lebih banyak teknik pengekstrakan mesra alam, cekap dan kos efektif, berdasarkan pendekatan pengekstrakan hijau. Dalam kerja ini, pengekstrakan berbantukan PEF dinilai sebagai kaedah baru dan hijau untuk menghasilkan ekstrak berfungsi, manakala pengekstrakan air panas tradisional digunakan untuk perbandingan. Selain itu, kesan gabungan kedua-dua teknik, rawatan PEF makroalga diikuti dengan pengekstrakan air panas tradisional, terhadap pemulihan bioaktif telah dikaji. Disebabkan jangkaan elektroporasi yang dihasilkan dalam membran sel selepas rawatan fizikal, pengekstrakan berikut dengan air panas boleh memudahkan lagi pembebasan bahan intraselular [86], meningkatkan hasil pengekstrakan. Satu masa selepas rawatan diperlukan untuk bahan untuk meresap keluar dari sel [87,88], dan dalam eksperimen ini penggantungan menunggu semalaman sehingga pengasingan cecair (ekstrak) daripada pulpa.

Mengenai medium pengekstrakan, air suling digunakan untuk menghasilkanrumpai lautekstrak untuk mengatasi batasan mengenai penggunaan toksik dan pelarut organik. Terbukti dengan air sebagai pelarut yang baik untuk pengekstrakan beberapa sebatian bioaktif daripadarumpai lauts [46,89–91] dan mesra alam. Selain itu, air lazimnya digunakan untuk pengekstrakan berbantukan PEF kerana ia merupakan konduktor yang baik untuk elektrik.

3.3.1. Prosedur Pengekstrakan

Untuk setiap replika dalam setiap kumpulan,rumpai lauts (15 g) direndam semalaman pada suhu bilik (22 ◦C) dalam air ternyahion (300 mL). Kemudian, penggantungan dirawat dengan PEF (PEF), dipanaskan (HW) atau kedua-duanya dirawat dan dipanaskan PEF (PEF tambah HW). Suspensi disimpan semalaman di dalam peti sejuk diikuti dengan penapisan dengan kertas turas kasar (20 µm). Kemudian turasan (ekstrak) disimpan pada suhu 4 ◦C sehingga dianalisis.

Pengekstrakan berbantukan medan elektrik berdenyut telah dijalankan dengan menggunakan penjana nadi yang dibina secara dalaman. Ia mempunyai kapasitor FuGHCK-200-2000 (FuG Elektronik GmbH, Rosenheim,Jerman) dan jurang percikan (18.5 kV OG75, Perkin-Elmer Optoelektronik, GMBH, Wiese baden, Jerman). Peralatan PEF menjana denyutan pereputan eksponen dengan lebar 0.96 µs dan amplitud 18 kV. Ruang rawatan kaca plexiglass dengan dimensi (L × H × W) 20 × 8 × 2.5 cm, dengan jarak terpendek antara elektrod plat digunakan untuk merawat ampaian dengan medan elektrik 8 kV/cm pada 1.2 Hz selama 10 minit.

Ekstrak HW telah disediakan dengan memanaskan ampaian dalam bikar dalam mandi air termostatik dan disimpan pada suhu 95 ◦C selama 45 minit. Untuk gabungan medan elektrik berdenyut dan rawatan pemanasan, ampaian telah dirawat PEF dan kemudian dimasukkan ke dalam bikar, dipanaskan dalam tab air, dan disimpan pada suhu 95 ◦C selama 45 minit.

3.3.2. Kekonduksian, pH dan Pengukuran Suhu

Kekonduksian elektrik dan pH ampaian rumpai laut diukur selepas direndam dan selepas rawatan pengekstrakan, pada suhu bilik, menggunakan meter pH (OrionStar™ A215 pH/Conductivity Benchtop Meter, Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) yang dilengkapi dengan sensor kekonduksian dan elektrod gabungan triod pH/ARC. Tambahan pula, perubahan suhu akibat rawatan telah direkodkan.

3.4. Profil Spektrum Ekstrak Rumpai Laut

Spektrum penyerapan UV-VIS bagi ekstrak rumpai laut yang berbeza diukur untuk julat 200 hingga 450 nm menggunakan pancaran ganda Thermo Scientific Evolution 350 UV Vis Spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) dengan 1 cm kuarzakuvet. Tiga imbasan dilakukan untuk setiap ekstrak rumpai laut.

3.5. Penentuan Jumlah Kandungan Polifenol

Jumlah kandungan fenolik (TPC) dalamrumpai lautekstrak ditentukan dengan menggunakan reagen Folin-Ciocalteu berikutan kaedah yang sedikit diubah suai yang diterangkan oleh Zhang [92] menggunakan Spektrofotometer Mikroplat LangitMultiskan (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA). Isipadu 20 µL daripadarumpai lautekstrak atau larutan piawai bersiri dicampur dengan100 µL reagen Folin–Ciocalteu (10 peratus dalam air suling). Selepas 5 minit, 80 µL larutan natrium karbonat 7.5 peratus (v/w) telah ditambah. Campuran tindak balas telah diinkubasi pada suhu bilik dan kegelapan selama 30 minit. Penyerapan diukur pada panjang gelombang 760 nm. Air suling digunakan sebagai kosong. Satu lengkung piawai asid gallik digunakan untuk menentukan jumlah kandungan fenolik dan dinyatakan sebagai µg setara asid gallik (GAE) setiap gram bahan kering (µg GAE/g dw).

3.6. Penentuan Jumlah Kandungan Flavonoid

Jumlah kandungan flavonoid (TFC) dalamrumpai lautekstrak ditentukan oleh kaedah yang diterangkan oleh Kamtekar [93] dan disesuaikan dengan 96-plat mikro telaga. Secara ringkas, isipadu 25 µLof ekstrak rumpai laut atau larutan piawai bersiri dicampur dengan 100 µL natrium nitrit(0.375 peratus b/v). Selepas 5 minit, 25 µL aluminium klorida (3 peratus b/v) telah ditambah ke dalam campuran dan diinkubasi selama 6 minit pada suhu bilik. Kemudian, 100 µL natrium hidroksida (2 peratus b/v) telah ditambah ke dalam campuran dan dicampur. Dengan serta-merta, penyerapan diukur pada panjang gelombang 510 nm. Air suling dan etanol digunakan sebagai kosong. Satu lengkung standard kuersetin (larut dalam etanol) digunakan untuk menentukan jumlah kandungan fenolik dan dinyatakan sebagai µg setara kuersetin (QE) setiap gram bahan kering (µg QE/g dw).

3.7. Penentuan Kandungan Karbohidrat

Kandungan gula bebas diukur mengikut kaedah yang diterangkan oleh [94], dengan sedikit pengubahsuaian. Sebanyak 50 µL larutan fenol (4 peratus ) dan 250 µL asid sulfurik (96 peratus ) telah ditambah kepada 100 µL sampel atau larutan piawai. Selepas 10 minit pengeraman pada suhu bilik, penyerapan campuran dibaca pada 490 nm. Satu lengkung standard glukosa digunakan untuk menentukan jumlah kandungan karbohidrat dan dinyatakan sebagai mg setara glukosa (GluE) setiap gram bahan kering (mg GluE/g dw).

3.8. Sifat Antioksidan Ekstrak Rumpai Laut

3.8.1. 2.2 Diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) Ujian Penghapusan Radikal Bebas

Theantioksidanaktiviti (DPPH) daripadarumpai lautekstrak ditentukan mengikut metodologi yang diterangkan sebelum ini [94] dengan beberapa pengubahsuaian. Secara ringkas, 200 µLof 10.825 × 10−5 M larutan DPPH telah ditambah kepada 100 µL sampel (1:1 dalam metanol) dalam96-plat perigi. Isipadu DPPH yang sama dicampurkan dengan 50 µL standard ditambah 50 µL metanol. Kemudian sampel dan standard diinkubasi di tempat yang gelap pada suhu bilik selama 30 minit. Penyerapan diukur pada panjang gelombang 517 nm. Air suling digunakan sebagai kosong. Keupayaan untuk menghilangkan radikal DPPH dikira menggunakan persamaan berikut:

Kesan scavenging ( peratus )=(1 − (Sampel − sampel kosong)/(Kawalan − Amethanol kosong)) × 100 (1)

di mana Acontrol ialah penyerapan kawalan (larutan DPPH tanpa sampel), sampel A ialah penyerapan sampel ujian (larutan DPPH ditambah sampel ujian), sampel kosong A ialah penyerapan sampel sahaja (sampel tanpa larutan DPPH) danAmethanol blank ialah penyerapan metanol sahaja. Komersilantioksidans (asid askorbik, asid gallic dan -tokoferol) digunakan sebagai kawalan positif.

cistanche adalah antioksidan

3.8.2. Ujian Kuasa Antioksidan Pengurangan Ion Ferrik (FRAP).

Aktiviti FRAP diukur mengikut kaedah Benzie dan Strain [95]. Secara ringkas, penimbal asetat (300 mM, pH 3.6), 2,4,6-tripyridyl-s-triazine (TPTZ) 10 mM dalam 40 mM HCl, dan FeCl3·6H2O (20 mM) dicampur dalam nisbah 10:1:1 untuk mendapatkan FRAPreagent yang berfungsi. Campuran tindak balas telah diinkubasi pada suhu 37 ◦C selama 10 minit. Sampel 50 µL daripada setiap ekstrak dicampur dengan 150 µL larutan FRAP yang berfungsi selama 8 minit pada suhu bilik. Penyerapan produk berwarna, Ferrous-TPTZ diukur pada panjang gelombang 593 nm. nilai FRAP bagirumpai lauts ekstrak dinyatakan sebagai µM setara trolox (TE) setiap gram bahan kering.

3.8.3. 2.2 Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-Sulfonic Acid) (ABTS) Assay

Analisis dilakukan menggunakan protokol penyahwarnaan ABTS [76] dengan beberapa pengubahsuaian. Kation radikal ABTS (ABTS. plus ) dihasilkan dengan bertindak balas ABTS (66 mg) dengan 10 mL larutan kalium persulfat (2.45 mM). Campuran dibiarkan dalam suhu bilik gelap selama 12-16 jam sebelum digunakan. ABTS. larutan tambah telah dicairkan dengan air kepada penyerapan 0.700 pada 734 nm. Campuran tindak balas (200 ul) dipindahkan ke amikroplat, 50 µL sampel ditambah dan kemudian 150 µL larutan reagen. Plat digoncang selama 10 saat pada kelajuan sederhana, dan penyerapan diukur pada 734 nm selepas 5 minit pengeraman pada suhu bilik. Lengkung piawai telah disediakan dengan memplot perencatan piawaian Trolox A734nm sebagai fungsi kepekatannya. Troloxequivalentantioksidannilai kapasiti (TEAC) sampel dikira menggunakan persamaan yang diperoleh daripada regresi linear lengkung piawai yang digantikan dengan nilai A734nm bagi setiap sampel:

TEAC (µM)=(perencatan sampel A734nm − pintasan)/cerun (2)

Theantioksidanaktiviti dinyatakan dari segi kepekatan TEAC, µmol/g alga berat kering.

3.9. Aktiviti Anti-Enzimatik Ekstrak Rumpai Laut

3.9.1. Ujian Perencatan Kolagenase

Kit ujian kolorimetrik aktiviti kolagenase (MAK293), yang dibeli daripada Sigma Aldrich, digunakan untuk menentukan perencatan kolagenase bagirumpai lautekstrak. Aktiviti kolagenase yang diukur menggunakan peptida sintetik (FALGPA) yang meniru struktur kolagen. Prosedur itu dilakukan mengikut arahan kit.

3.9.2. Ujian Perencatan Elastase

Perencatan elastase daripadarumpai lauts ekstrak telah disiasat dalam larutan penimbal TRIS dengan kaedah yang diubah suai seperti yang diterangkan sebelum ini [96]. Secara ringkas, 100 µL larutan penimbal TRIS 0.1 M(pH 8.0), 25 µL elastase (1 U/mL dalam penimbal TRIS) dan 25 µL ekstrak sampel telah dicampur dan diinkubasi selama 15 minit pada 30 C sebelum menambah substrat untuk memulakan tindak balas. Selepas masa pengeraman, 50 µL larutan AAAPVN 2 mM telah ditambah. Kemudian, penyerapan pada420 nm dipantau selama 20 minit menggunakan pembaca plat mikro di bawah suhu malar 30 C. Akhirnya, perencatan elastase dikira dalam peratusan menggunakan persamaan:

peratus Perencatan=[(∆Kawalan Abs/min − ∆Sampel Abs/min)/∆Kawalan Abs/min] × 100 (3)

di mana Abscontrol ialah penyerapan ujian menggunakan penimbal dan bukannya perencat (sampel) dan sampel Abs ialah penyerapan ekstrak sampel. Quercetin digunakan sebagai kawalan positif. Penampan TRIS digunakan sebagai kosong.

kesan daripadaekstrak cistanche:anti penuaan

3.9.3. Ujian Perencatan Tirosinase

Tirosinaseujian perencatan dilakukan mengikut kaedah yang diterangkan sebelum ini oleh [66] menggunakan L-DOPA sebagai substrat. A 20 µL sampel, 10 µL cendawantyrosinaselarutan (50 U/mL dalam penimbal fosfat) dan 80 µL penimbal fosfat (pH=6.8) telah dicampur dalam plat mikro dan pra-inkubasi pada 37 ◦C selama 5 minit. Kemudian, 90 µL L-DOPA(2 mg/mL) telah ditambah. Pembentukan dopachrome segera dipantau selama 20 minit pada 475 nm dalam pembaca plat mikro di bawah suhu malar 37 ◦C. Peratusan perencatan daripadatyrosinaseenzim dikira menggunakan persamaan:

peratus Perencatan=[(∆Abs/mincontrol − ∆Abs/min sampel)/∆Abs/mincontrol] × 100 (4)

di mana kawalan Abs ialah penyerapan ujian menggunakan penimbal dan bukannya perencat (sampel) dan sampel Abs ialah penyerapan ekstrak sampel. Quercetin digunakan sebagai kawalan positif. Penampan fosfat digunakan sebagai kosong.

3.9.4. Ujian Perencatan Hyaluronidase

Aktiviti perencatan hyaluronidase diukur seperti yang diterangkan sebelum ini oleh [66] dengan sedikit pengubahsuaian. Isipadu 100 µl jenis-1-S bovine testes hyaluronidase (2100 U/mL)dilarutkan dalam 0. Penampan asetat 1 M (pH 3.5) dicampur dengan 100 µL ekstrak dan diinkubasi pada suhu 37 ◦C selama 20 minit. Isipadu 200 µL 6 mM kalsium klorida telah ditambah kepada campuran tindak balas, dan kemudian campuran itu diinkubasi pada suhu 37 ◦C selama 20 minit. Hyaluronidase teraktif Ca2 ditambah ini dirawat dengan 250 µL natrium hyaluronat (1.2 mg/mL) yang dilarutkan dalam penimbal asetat 0.1 M (pH 3.5), dan kemudian diinkubasi dalam mandi air pada suhu 37 ◦C selama 40 minit. Sebanyak 50 µL natrium hidroksida 0.9 M dan 100 µL natrium borat 0.2 M telah ditambahkan ke dalam campuran tindak balas dan kemudian diinkubasi dalam mandi air mendidih selama 5 minit. Selepas disejukkan ke suhu bilik, 250 µL larutan ρ-dimethylaminobenzaldehyde (DAMB) telah ditambah ke dalam campuran tindak balas. Larutan DAMB disediakan dengan melarutkan 0.25 gof DAMB dalam 21.88 mL 100 peratus asid asetik dan 3.12 mL asid hidroklorik 10N. Kumpulan kawalan telah dirawat dengan 100 µL 5 peratus air dan bukannya ekstrak. Penyerapan diukur pada panjang gelombang 585 nm selepas 45 minit. Peratusan perencatan enzim telah dikira menggunakan persamaan berikut:

perencatan peratus=[(Abscontrol − Abssample)/Abscontrol] × 100 (5)

di mana kawalan Abs ialah penyerapan ujian menggunakan penimbal dan bukannya perencat (sampel) dan sampel Abs ialah penyerapan ekstrak sampel. Asid tannik digunakan sebagai piawai rujukan.

3.10. Analisis statistik

Purata analisis tiga kali ganda bagi setiap ekstrak telah dikira dan digunakan untuk mencari nilai min dan sisihan piawai bagi setiap kumpulan (n {{0}}). Model linear am (GLM) untuk faktor tetap digunakan untuk menilai kesan utama dan interaksi dua hala bagi faktor eksperimen (spesies dan kaedah pengekstrakan) pada pembolehubah yang diukur. Tambahan pula, ANOVA dan ujian Tukey-Kramer digunakan untuk mengenal pasti perbezaan ketara (p <0.05) antara="" kumpulan.="" korelasi="" pearson="" digunakan="" untuk="" menilai="" hubungan="" linear="" antara="" pembolehubah.="" analisis="" komponen="" utama="" (pca)="" digunakan="" untuk="" mengesan="" struktur="" dalam="" hubungan="" antara="" pembolehubah="" yang="" diukur="" dan="" faktor="" eksperimen.="" thepca="" mengurangkan="" data="" besar="" kepada="" set="" kecil="" gabungan="" linear="" pembolehubah="" berkaitan="" (iaitu,="" faktor)="" berdasarkan="" corak="" korelasi="" antara="" pembolehubah="" asal.="" gabungan="" atribut="" linearat="" yang="" terhasil="" boleh="" digunakan="" untuk="" memprofilkan="" ciri="" produk="" tertentu="" berdasarkan="" pembolehubah="" yang="" dikaji.="" semua="" analisis="" statistik="" dilakukan="" menggunakan="" ncss="" 2020="" statisticalsoftware="" (2020)="" (ncss,="" llc.,="" kaysville,="" ut,="">

ekstrak cistanche anti-penuaan

4. Kesimpulan

Hasil percubaan saringan pertama ini menunjukkan potensi tiga bahasa Icelandrumpai lautspesies dengan memberikan kesan berfaedah yang berkesan melalui beberapa laluan. Pendekatan hijau yang dibangunkan menggunakan medan elektrik berdenyut akueus mempamerkan hasil yang serupa dengan pengekstrakan air panas tradisional, menunjukkan beberapa kelebihan seperti sifat bukan haba dan masa pengekstrakan yang lebih pendek (10 min vs. 45 min). Di antara tiga spesies alga, makroalga coklat A. esculenta menunjukkan kandungan tertinggi TPC dan TFC juga mempamerkanantioksidankapasiti Selain itu, ekstrak air A. esculenta mempamerkan aktiviti perencatan yang lebih baik daripada P. palmaria dan U. lactuca terhadap kolagenase, elastase, tyrosinase dan hyaluronidase sebagai yang paling menjanjikan.rumpai lautspesies dengan aktiviti anti-enzimatik yang sangat baik untuk kegunaannya dalam pemutihan kulit,anti penuaandan kesihatan kulit. Menariknya, theA. Ekstrak esculenta yang dihasilkan melalui kaedah PEF menunjukkan perencatan kolagenase sebanyak 91 peratus, lebih tinggi daripada aktiviti perencatan yang ditunjukkan oleh pengekstrakan air panas tradisional dan lebih tinggi daripada perencat yang disediakan oleh kit komersial. Kesimpulannya, kajian awal kami mencadangkan bahawa bahasa Icelandrumpai laut-ekstrak berasaskan, terutamanya ekstrak daripada brownmacroalgae A. esculenta, yang dihasilkan oleh pengekstrakan berbantukan medan elektrik berdenyut akueus adalah bahan-bahan berfungsi berpotensi yang boleh digunakan sebagai sebatian aktif untuk formulasi kosmetik dan kosmeseutikal dalam masa terdekat.

Rujukan

1. Ariede, MB; Candido, TM; Jacome, ALM; Velasco, MVR; de Carvalho, JCM; Bayi, AR Sifat kosmetik alga—Semakan. Algal Res. 2017, 25, 483–487. [CrossRef]

2. Makkar, HPS; Tran, G.; Heuzé, V.; Giger-Reverdin, S.; Lessire, M.; Lebar, F.; Ankers, P. Rumpai laut untuk diet ternakan: Kajian semula.Anim. Feed Sci. Technol. 2016, 212, 1–17. [CrossRef]

3. O'Connor, J.; Meaney, S.; Williams, GA; Hayes, M. Pengekstrakan Protein daripada Empat Rumpai Laut Berbeza Menggunakan Tiga Strategi Pra-Rawatan Fizikal yang Berbeza. Molekul 2020, 25, 2005. [CrossRef]

4. Maximo, P.; Ferreira, LM; Branco, P.; Lima, P.; Lourenço, A. Metabolit Sekunder dan Aktiviti Biologi Makroalga Invasif Eropah Selatan. Dadah Mac 2018, 16, 265. [CrossRef]

5. Barkia, I.; Saari, N.; Manning, SR Microalgae untuk Produk Bernilai Tinggi ke arah Kesihatan dan Pemakanan Manusia. Dadah Mac 2019,17, 304. [CrossRef]

6. Gomez-Zavaglia, A.; Prieto Lage, MA; Jimenez-Lopez, C.; Mejuto, JC; Simal-Gandara, J. Potensi Rumpai Laut Sebagai Sumber Bahan Fungsian Nilai Prebiotik dan Antioksidan. Antioksidan 2019, 8, 406. [CrossRef] [PubMed]

7. Salehi, B.; Sharifi-Rad, J.; Seca, AML; Pinto, DCGA; Michalak, I.; Trincone, A.; Mishra, AP; Nigam, M.; Zam, W.; Martins, N. Trend Semasa tentang Rumpai Laut: Melihat Komposisi Kimia, Fitoharmacologi dan Aplikasi Kosmetik. Molekul2019, 24, 4182. [CrossRef]

8. Ghazali, E.; Tidak lama lagi, PC; Mutum, DS; Nguyen, B. Kesihatan dan kosmetik: Menyiasat nilai pengguna untuk membeli produk penjagaan peribadi organik. J. Peruncitan. Makan. Serv. 2017, 39, 154–163. [CrossRef]

9. Amberg, N.; Fogarassy, ​​C. Tingkah Laku Pengguna Hijau dalam Pasaran Kosmetik. Sumber 2019, 8, 137. [CrossRef]

10. Pereira, L. Rumpai Laut sebagai Sumber Bahan Bioaktif dan Terapi Penjagaan Kulit—Kosmeseutikal, Algotheraphy dan Thalassotherapy. Kosmetik 2018, 5, 68. [CrossRef]

11. Martins, A.; Vieira, H.; Gaspar, H.; Santos, S. Memasarkan produk semula jadi marin dalam industri farmaseutikal dan kosmeseutikal: Petua untuk berjaya. Dadah Mac 2014, 12, 1066–1101. [CrossRef] [PubMed]

12. Agatonovic-Kustrin, S.; Morton, D. Cosmeceuticals berasal daripada bahan bioaktif yang terdapat dalam alga marin. Oseanografi 2013,1, 106.

13. Wang, H.-MD; Chen, C.-C.; Huynh, P.; Chang, J.-S. Meneroka potensi penggunaan alga dalam kosmetik. Bioresour. Technol. 2015,184, 355–362. [CrossRef]

14. Jahan, A.; Ahmad, IZ; Fatima, N.; Ansari, VA; Akhtar, J. Sebatian bioaktif alga dalam industri kosmeseutikal: Kajian semula.Phycologia 2017, 56, 410–422. [CrossRef]

15. Morone, J.; Alfeus, A.; Vasconcelos, V.; Martins, R. Mendedahkan potensi cyanobacteria dalam kosmetik dan kosmeseutikal—Pendekatan bioaktif baharu. Algal Res. 2019, 41, 101541. [CrossRef]

16. Cikoš, A.-M.; Jerkovic, I.; Molnar, M.; Šubari´c, D.; Joki'c, S. Aliran baharu untuk aplikasi produk semula jadi makroalga. Nat. Prod.Res. 2019, 37, 1–12. [CrossRef]

17. Thring, TS; Hili, P.; Naughton, DP Anti-kolagenase, anti-elastase dan aktiviti anti-oksida ekstrak daripada 21 tumbuhan. BMCComplement. Altern. Med. 2009, 9, 27. [CrossRef]

18. Jacobsen, C.; Sørensen, AM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, Sumber DB, Pengekstrakan, Pencirian, dan Aplikasi Antioksidan Novel daripada Rumpai Laut. Annu. Rev. Sains Makanan. Technol. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]

19. Castejón, N.; Señoráns, FJ Pengekstrakan serentak dan pecahan omega-3 acylglycerols dan glikolipid daripada biojisim mikroalga basah Nannochloropsis gaditana menggunakan cecair bertekanan. Algal Res. 2019, 37, 74–82. [CrossRef]

20. Mohamed, MEA; Eissa, AHA Denyut medan elektrik untuk teknologi pemprosesan makanan. Struktur. Fungsi. Makanan Eng. 2012, 11, 275–306.

21. Geada, P.; Rodrigues, R.; Loureiro, L.; Pereira, R.; Fernandes, B.; Teixeira, JA; Vasconcelos, V.; Vicente, AA Electrotechnologiesapplyed to microalgal biotechnology—Aplikasi, teknik dan trend masa hadapan. memperbaharui. Sustain. Rev. Tenaga 2018, 94, 656–668.[CrossRef]

22. Poojary, MM; Barba, FJ; Aliakbarian, B.; Donsì, F.; Pataro, G.; Dias, DA; Juliano, P. Teknologi alternatif yang inovatif untuk mengekstrak karotenoid daripada mikroalga dan rumpai laut. Dadah Mac. 2016, 14, 214. [CrossRef] [PubMed]

23. Vorobiev, E.; Lebovka, N. 2—Pengekstrakan daripada Makanan dan Biobahan yang Dipertingkatkan oleh Tenaga Elektrik Berdenyutan. Dalam Teknologi Pemprosesan Makanan Inovatif; Knoerzer, K., Juliano, P., Smithers, G., Eds.; Woodhead Publishing: Sawston, UK, 2016; ms 31–56.

24. Käferböck, A.; Smetana, S.; de Vos, R.; Schwarz, C.; Toepfl, S.; Parniakov, O. Pengekstrakan mampan komponen berharga dari Spirulina dibantu oleh teknologi medan elektrik berdenyut. Algal Res. 2020, 48, 101914. [CrossRef]

25. Parniakov, O.; Barba, FJ; Grimi, N.; Marchal, L.; Jubeau, S.; Lebovka, N.; Vorobiev, E. Medan elektrik berdenyut dibantu pengekstrakan sebatian bernilai nutrisi daripada mikroalga Nannochloropsis spp. menggunakan campuran binari pelarut organik dan air.Innov. Sains Makanan. Muncul. Technol. 2015, 27, 79–85. [CrossRef]

26. Scherer, D.; Krust, D.; Frey, W.; Mueller, G.; Nick, P.; Gusbeth, C. Pemulihan protein berbantukan medan elektrik berdenyut (PEF) daripada ChlorellaVulgaris dimediasi oleh proses enzimatik selepas kematian sel. Algal Res. 2019, 41, 101536. [CrossRef]

27. Naseri, A.; Marinho, GS; Holdt, SL; Bartela, JM; Jacobsen, C. Pengekstrakan berbantukan enzim dan pencirian protein daripada rumpai laut Palmaria palmitate. Algal Res. 2020, 47, 101849. [CrossRef]

menyeberang

28. Robin, A.; Kazir, M.; Sack, M.; Israel, A.; Frey, W.; Mueller, G.; Liveney, YD; Golberg, A. Pekat Protein Berfungsi Diekstrak daripada Green Marine Macroalga Ulva sp., oleh Medan Elektrik Berdenyut Voltan Tinggi dan Akhbar Mekanikal. ACS Sustain. Kimia. Eng.2018, 6, 13696–13705. [CrossRef]

29. Einarsdóttir, R.; Þórarinsdóttir, KA; Aðalbjörnsson, BV; Guðmundsson, M.; Marteinsdóttir, G.; Kristbergsson, K. Kesan parameter rawatan dibantu medan elektrik berdenyut pada pengekstrakan akueus mentah Laminaria digitata. J. Appl. Phycol. 2021, 33,3287–3296. [CrossRef]

30. Posma, PR; Cerezo-Chinarro, O.; Akkerman, RJ; Olivieri, G.; Wijffels, RH; Brandenburg, WA; Eppink, MHM Biorefinery ofthe macroalgae Ulva Lactuca: Pengekstrakan protein dan karbohidrat melalui penghancuran ringan. J. Appl. Phycol. 2018, 30, 1281–1293.[CrossRef]

31. Zbinden, MDA; Sturm, BSM; Nord, RD; Carey, WJ; Moore, D.; Shinogle, H.; Stagg-Williams, SM Denyut medan elektrik (PEF)sebagai prarawatan intensifikasi untuk pengekstrakan lipid pelarut yang lebih hijau daripada mikroalga. Bioteknol. Bioeng. 2013, 110, 1605–1615.[CrossRef]

32. Silve, A.; Papachristou, I.; Wüstner, R.; Sträßner, R.; Schirmer, M.; Leber, K.; Guo, B.; Interrante, L.; Posten, C.; Frey, W. Pengekstrakan lipid daripada mikroalga basah Auxenochlorella protothecoides menggunakan rawatan medan elektrik berdenyut dan campuran etanol-heksana. AlgalRes. 2018, 29, 212–222. [CrossRef]

33. Chittapun, S.; Jonjaroen, V.; Khumrangsee, K.; Charoenrat, T. Pengekstrakan C-phycocyanin daripada dua sianobakteria air tawar melalui teknik beku-cair dan medan elektrik berdenyut untuk meningkatkan kecekapan dan ketulenan pengekstrakan. Algal Res. 2020, 46, 101789. [CrossRef]

34. Aryee, ANA; Agyei, D.; Akanbi, TO Pemulihan dan penggunaan pigmen rumpai laut dalam pemprosesan makanan. Curr. Pendapat. Food Sci.2018, 19, 113–119. [CrossRef]

35. Nowacka, M.; Tappi, S.; Wiktor, A.; Rybak, K.; Miszczykowska, A.; Czyzewski, J.; Drozdzal, K.; Witrowa-Rajchert, D.; Tylewicz, U. Kesan Medan Elektrik Berdenyut terhadap Pengekstrakan Sebatian Bioaktif daripada Ubi bit. Makanan 2019, 8, 244. [CrossRef]

36. Martínez, JM; Delso, C.; Álvarez, I.; Raso, J. Pengekstrakan berbantukan medan elektrik berdenyut bagi sebatian berharga daripada mikroorganisma. Fahami. Rev. Sains Makanan. Makanan Saf. 2020, 19, 530–552. [CrossRef]

37. Pataro, G.; Goettel, M.; Straessner, R.; Gusbeth, C.; Ferrari, G.; Frey, W. Kesan rawatan PEF pada pengekstrakan sebatian berharga daripada mikroalga C. vulgaris. Kimia. En. Trans. 2017, 57, 67–72.

38. Brunton, NP; Luengo, E. Medan Elektrik Berdenyut untuk Pengekstrakan Metabolit Sekunder daripada Tumbuhan. Dalam Medan Elektrik Berdenyut untuk Pengekstrakan Metabolit Sekunder daripada Tumbuhan; Miklavcic, D., Ed.; Penerbitan Antarabangsa Springer: Cham, Switzerland, 2017;pp. 1–15.

39. Schiener, P.; Hitam, KD; Stanley, MS; Hijau, DH Perubahan bermusim dalam komposisi kimia spesies rumpai laut Laminaria digitata, Laminaria hyperborea, Saccharina latissima dan Alaria esculenta. J. Appl. Phycol. 2015, 27, 363–373. [CrossRef]

40. Salgado, LT; Tomazetto, R.; Cinelli, LP; Farina, M.; Filho, GMA Pengaruh alga coklat ke atas sebatian fenolik keupayaan penyerapan sinaran ultraungu secara in vitro. Braz. J. Oceanogr. 2007, 55, 145–154. [CrossRef]

41. Orfanoudaki, M.; Hartmann, A.; Karsten, U.; Ganzera, M. Pemprofilan kimia asid amino seperti mikosporin dalam spesies alga dua puluh tiga. J. Phycol. 2019, 55, 393–403. [CrossRef]

42. Pangestuti, R.; Siahaan, EA; Kim, S.-K. Bahan Pelindung Foto Berasal daripada Alga Marin. Dadah Mac 2018, 16, 399.[CrossRef] [PubMed]

43. Schneider, G.; Figueroa, FL; Vega, J.; Chaves, P.; Álvarez-Gómez, F.; Korbee, N.; Bonomi-Barufi, J. Sifat perlindungan foto organisma fotosintesis marin yang ditanam di kawasan pendedahan ultraungu tinggi: Aplikasi kosmetik. Algal Res. 2020,49, 101956. [CrossRef]

44. Nishida, Y.; Kumagai, Y.; Michiba, S.; Yasui, H.; Kishimura, H. Pengekstrakan Cekap dan Kapasiti Antioksidan Asid Amino Seperti Mikosporin daripada Alga Merah Dulse Palmaria palmitat di Jepun. Dadah Mac. 2020, 18, 502. [CrossRef] [PubMed]

45. Rehm, E.; Dalgleish, F.; Huot, M.; Matteoli, S.; Archambault, P.; Lambert Girard, S.; Piché, M.; Lagunas-Morales, J. Membandingkan teknik LiDAR penyerapan pendarfluor dan pembezaan untuk mengesan biojisim alga dengan aplikasi pada substrat Artik. InOcean Sensing dan Monitoring X; Persatuan Antarabangsa untuk Optik dan Fotonik: Bellingham, WA, Amerika Syarikat, 2018; Jilid 10631, hlm. 106310Z.

46. ​​Wang, T.; Jonsdottir, R.; Ólafsdóttir, G. Jumlah sebatian fenolik, penghapusan radikal dan pengelasan logam ekstrak daripada rumpai laut Iceland. Kimia Makanan. 2009, 116, 240–248. [CrossRef]

47. Bedoux, G.; Hardouin, K.; Burlot, AS; Bourgougnon, N. Bab Dua Belas—Komponen Bioaktif daripada Rumpai Laut: Aplikasi Kosmetik dan Pembangunan Masa Depan. Dalam Kemajuan dalam Penyelidikan Botani; Bourgougnon, N., Ed.; Akhbar Akademik: Cambridge, MA, USA, 2014; Jilid 71, hlm. 345–378.

48. Roleda, SAYA; Marfaing, H.; Desnica, N.; Jónsdóttir, R.; Skjermo, J.; Rebours, C.; Nitschke, U. Variasi dalam kandungan polifenol dan logam berat bagi biojisim pukal rumpai laut yang dituai liar dan ditanam: Penilaian risiko kesihatan dan implikasi untuk aplikasi makanan. Kawalan Makanan 2019, 95, 121–134. [CrossRef]

49. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Pengoptimuman Frekuensi Ultrasound, Masa Pengekstrakan dan Pelarut untuk Pemulihan Polifenol, Phlorotannin dan Aktiviti Antioksidan Berkaitan daripada Rumpai Laut Perang. Dadah Mac 2020, 18, 250. [CrossRef]

50. Afonso, C.; Matos, J.; Guarda, I.; Gomes-Bispo, A.; Gomes, R.; Cardoso, C.; Gueifão, S.; Delgado, I.; Coelho, I.; Castanheira, I.; et al.Potensi bioaktif dan pemakanan Alaria esculenta dan Saccharina latissima. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 501–513. [CrossRef]

51. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonçalves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Seaweed Phenolics:Dari Pengekstrakan kepada Aplikasi. Dadah Mac 2020, 18, 384. [CrossRef]

52. Farasat, M.; Khavari-Nejad, RA; Nabavi, SM; Namjooyan, F. Aktiviti Antioksidan, Jumlah Kandungan Fenolik dan Flavonoid daripada beberapa Rumpai Laut Hijau yang Boleh Dimakan dari Pantai Utara Teluk Parsi. IJPR 2014, 13, 163–170. [PubMed]

53. Manivannan, K.; Thirumaran, G.; Devi, GK; Anantharaman, P.; Balasubramanian, T. Komposisi Berhampiran Kumpulan Berbeza Rumpai Laut dari Perairan Pantai Vedalai (Teluk Mannar): Pantai Tenggara India. Timur Tengah J. Sci. Res. 2009, 4, 72–77.

54. Mišurcová, L.; Škrovánková, S.; Samek, D.; Ambrožová, J.; Mach ˚u, L. Bab 3—Faedah Kesihatan Polisakarida Alga dalam Pemakanan Manusia. Dalam Kemajuan dalam Penyelidikan Makanan dan Pemakanan; Henry, J., Ed.; Akhbar Akademik: Cambridge, MA, Amerika Syarikat, 2012; Jilid66, hlm. 75–145.

55. Lafarga, T.; Acién-Fernández, FG; Garcia-Vaquero, M. Peptida bioaktif dan karbohidrat daripada rumpai laut untuk aplikasi makanan: Kejadian semula jadi, pengasingan, penulenan dan pengenalan. Algal Res. 2020, 48, 101909. [CrossRef]

56. Mutripah, S.; Meinita, MDN; Kang, J.-Y.; Jeong, G.-T.; Susanto, AB; Prabowo, RE; Hong, Y.-K. Penghasilan bioetanol daripada hidrolisis Palmaria palmata menggunakan asid sulfurik dan penapaian dengan yis bir. J. Appl. Phycol. 2014, 26, 687–693.[CrossRef]

57. Dominguez, H.; Loret, EP Ulva lactuca, Sumber Masalah dan Kekayaan Berpotensi. Dadah Mac 2019, 17, 357. [CrossRef]

58. Kidgell, JT; Magnusson, M.; de Nys, R.; Glasson, CRK Ulvan: Kajian sistematik pengekstrakan, komposisi dan fungsi.Algal Res. 2019, 39, 101422. [CrossRef]

59. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Arnous, A.; Jacobsen, C. Pengekstrakan enzimatik bahan antioksidan daripada rumpai laut Denmark dan pencirian prinsip aktif. Algal Res. 2021, 56, 102292. [CrossRef]

60. Yuan, Y.; Zhang, J.; Fan, J.; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Pengekstrakan sebatian fenolik dengan bantuan gelombang mikro daripada empat spesies makroalga coklat ekonomi dan penilaian aktiviti antioksidannya dan kesan perencatan pada -amilase, -glukosidase, lipase pankreas dan tyrosinase. Int. Makanan Re. J. 2018, 113, 288–297. [CrossRef]

61. Balboa, EM; Conde, E.; Moure, A.; Falqué, E.; Domínguez, H. Sifat antioksidan in vitro bagi ekstrak mentah dan sebatian daripada alga perang. Kimia Makanan. 2013, 138, 1764–1785. [CrossRef]

62. Kainama, H.; Fatmawati, S.; Santoso, M.; Papilaya, PM; Ersam, T. Hubungan Penghapusan Radikal Bebas dan Jumlah Kandungan Phenolicand Flavonoid Garcinia lasoar PAM. Pharm. Kimia. J. 2020, 53, 1151–1157. [CrossRef]

63. Dang, TT; Van Vuong, Q.; Schreider, MJ; Bowyer, MC; Van Altena, IA; Scarlett, CJ Pengoptimuman keadaan pengekstrakan dibantu ultrasound untuk kandungan fenolik dan aktiviti antioksidan alga Hormosira banksii menggunakan metodologi permukaan tindak balas. J. Appl. Phycol. 2017, 29, 3161–3173. [CrossRef]

64. Couteau, C.; Coiffard, L. Bab 14—Aplikasi Rumpai Laut dalam Kosmetik. Dalam Rumpai Laut dalam Kesihatan dan Pencegahan Penyakit; Fleurence, J., Levine, I., Eds.; Akhbar Akademik: San Diego, CA, Amerika Syarikat, 2016; ms 423–441.

65. Tsukahara, K.; Takema, Y.; Moriwaki, S.; Tsuji, N.; Suzuki, Y.; Fujimura, T.; Imokawa, G. Perencatan Terpilih FibroblastElastase Kulit Menimbulkan Pencegahan Bergantung Kepekatan terhadap Pembentukan Kedutan Berpengaruh Ultraviolet B. J. Menyiasat. Dermatol. 2001,117, 671–677. [CrossRef]

66. Liyanaarachchi, GD; Samarasekera, JKRR; Mahanama, KRR; Hemalal, KDP Tyrosinase, elastase, hyaluronidase, aktiviti perencat dan antioksidan tumbuhan ubatan Sri Lanka untuk kosmetik baru. Prod Tanaman Ind. 2018, 111, 597–605. [CrossRef]

67. Gupta, PL; Rajput, M.; Oza, T.; Trivedi, U.; Sanghvi, G. Kecemerlangan Produk Mikrob dalam Industri Kosmetik. Nat. Prod.Bioprospect. 2019, 9, 267–278. [CrossRef] [PubMed]

68. Zolghadri, S.; Bahrain, A.; Hassan Khan, MT; Munoz-Munoz, J.; Garcia-Molina, F.; Garcia-Canovas, F.; Saboury, AA Kajian menyeluruh mengenai perencat tyrosinase. J. Enzim Inhib. Med. 2019, 34, 279–309. [CrossRef]

69. Couteau, C.; Coiffard, L. Phycocosmetics dan Kosmetik Marin Lain, Kosmetik Khusus yang Dirumus Menggunakan Sumber Marin. Mac. Dadah 2020, 18, 322. [CrossRef]

70. Sari, DM; Anwar, E.; Arifianti, AE Antioksidan dan aktiviti perencat tyrosinase daripada ekstrak etanol rumpai laut perang (Turbinaria conoides) sebagai bahan pencerah. Pharm. J. 2019, 11, 379–382. [CrossRef]

71. Brenner, M.; Pendengaran, VJ Peranan perlindungan melanin terhadap kerosakan UV pada kulit manusia. Photochem. Photobiol. 2008, 84,539–549. [CrossRef] [PubMed]

72. Lee, SY; Baek, N.; Nam, T.-G. Perencat tirosinase semulajadi, semisintetik dan sintetik. J. Enzim Inhib. Med. Kimia. 2016, 31,1–13. [CrossRef] [PubMed]

73. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotannin Ekstrak daripada FucalesDicirikan oleh HPLC-DAD-ESI-MSn: Pendekatan kepada Kapasiti Perencatan Hyaluronidase dan Sifat Antioksidan. Mar.Dadah 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef] [PubMed]

74. Fayad, S.; Nehmé, R.; Tannoury, M.; Lesellier, E.; Pichon, C.; Morin, P. Ekstrak air Macroalga Padina pavonica yang diperoleh melalui pengekstrakan cecair bertekanan dan pengekstrakan berbantukan gelombang mikro menghalang aktiviti hyaluronidase seperti yang ditunjukkan oleh elektroforesis kapilari.J. Chromatogr. A 2017, 1497, 19–27. [CrossRef] [PubMed]

75. Athukorala, Y.; Kim, K.-N.; Jeon, Y.-J. Sifat antiproliferatif dan antioksidan hidrolisat enzimatik daripada alga perang, Ecklonia cava. Kimia Makanan. Toksik. 2006, 44, 1065–1074. [CrossRef]

76. Jiménez-Escrig, A.; Gómez-Ordóñez, E.; Rupérez, P. Brown dan rumpai laut merah sebagai sumber berpotensi nutraseutikal antioksidan.J. Appl. Phycol. 2012, 24, 1123–1132. [CrossRef]

77. Karawita, R.; Siriwardhana, N.; Lee, K.-W.; Heo, M.-S.; Yeo, I.-K.; Lee, Y.-D.; Jeon, Y.-J. Spesies oksigen reaktif scavenging, metalchelation, mengurangkan kuasa dan sifat perencatan peroksidasi lipid pecahan pelarut berbeza daripada Hizikia fusiformis.Eur. Makanan Re. Technol. 2005, 220, 363–371. [CrossRef]

78. Jormalainen, V.; Honkanen, T. Variasi dalam pemilihan semula jadi untuk pertumbuhan dan phlorotannin dalam alga perang Fucus vesiculosus.J. Evolut. biol. 2004, 17, 807–820. [CrossRef] [PubMed]

79. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Analisis kromatografi cecair berprestasi tinggi bagi phlorotannins daripada alga perang Fucus vesiculosus. Phytochem. dubur. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

80. Mareˇcek, V.; Mikyška, A.; Hampel, D.; Cejka, P.; Neuwirthov ˇ á, J.; Malachová, A.; Kaedah Cerkal, R. ABTS dan DPPH sebagai alat untuk mengkaji kapasiti antioksidan barli musim bunga dan malt. J. Bijirin Sci. 2017, 73, 40–45. [CrossRef]

81. Asada, M.; Sugie, M.; Inoue, M.; Nakagomi, K.; Hongo, S.; Murata, K.; Irie, S.; Takeuchi, T.; Tomizuka, N.; Oka, S. Kesan Perencatan Asid Alginik pada Hyaluronidase dan pada Pelepasan Histamin daripada Sel Mast. Biosci. Bioteknol. Biokim. 1997, 61, 1030–1032.[CrossRef] [PubMed]

82. Mase, T.; Yamauchi, M.; Kato, Y.; Esaki, H.; Isshiki, S. Hyaluronidase-Inhibiting Acid Polysaccharide Diasingkan daripada PorphyridiumPurpureum. Koleksi Esei Penyelidikan di Universiti Gakuen Wanita Suishan. Nat. Sci. 2013, 44, 105–113.83. Tolpeznikaite, E.; Bartkevics, V.; Ruzauskas, M.; Pilkaityte, R.; Viskelis, P.; Urbanaviciene, D.; Zavistanaviciute, P.; Zokaityte, E.;Ruibys, R.; Bartkiene, E. Pencirian Ekstrak Makro dan Mikroalga Sebatian Bioaktif dan Unsur Mikro dan MakroPeralihan daripada Alga kepada Ekstrak. Makanan 2021, 10, 2226. [CrossRef]

84. Gómez, I.; Huovinen, P. Corak fungsi morfo dan pengezonan rumpai laut Chile Selatan: Kepentingan ciri fotosintesis dan bio-optik. Mac Ecol. Prog. Ser. 2011, 422, 77–91. [CrossRef]

85. Karsten, U.; Wiencke, C. Faktor-faktor yang Mengawal Pembentukan Asid Amino seperti Mikosporin yang menyerap UV dalam Palmitat RedAlga Palmaria Marin dari Spitsbergen (Norway). J. Tumbuhan. Fisiol. 1999, 155, 407–415. [CrossRef]

86. Ummat, V.; Sivagnanam, SP; Rajauria, G.; O'Donnell, C.; Tiwari, BK Kemajuan dalam teknik pra-rawatan dan teknologi pengekstrakan hijau untuk bioaktif daripada rumpai laut. Trends Food Sci. Technol 2021, 110, 90–106. [CrossRef]

87. Boussetta, N.; Lanoisellé, J.-L.; Bedel-Cloutour, C.; Vorobiev, E. Pengekstrakan bahan larut daripada pomace anggur oleh nyahcas elektrik voltan tinggi untuk pemulihan polifenol: Kesan rawatan sulfur dioksida dan haba. J. Makanan Eng. 2009, 95, 192–198.[CrossRef]

88. Goettel, M.; Eing, C.; Gusbeth, C.; Straessner, R.; Frey, W. Medan elektrik berdenyut dibantu pengekstrakan barang berharga intrasel daripada mikroalga. Algal Res. 2013, 2, 401–408. [CrossRef]

89. Hwang, P.-A.; Wu, C.-H.; Gau, S.-Y.; Chien, S.-Y.; Hwang, D.-F. Aktiviti antioksidan dan merangsang imun ekstrak air panas daripada rumpai laut Sargassum epiphyllum. J. Mar. Sci. Technol. 2010, 18, 41–46. [CrossRef]

90. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Sebatian fenolik dan aktiviti antioksidan spesies rumpai laut terpilih dari pantai Denmark. Kimia Makanan. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

91. Godlewska, K.; Michalak, I.; Tuhy, L.; Chojnacka, K. Biostimulan Pertumbuhan Tumbuhan Berdasarkan Kaedah Berbeza Pengekstrakan Rumpai Laut dengan Air. BioMed Res. Int. 2016, 2016, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

92. Zhang, Q.; Zhang, J.; Shen, J.; Silva, A.; Dennis, DA; Barrow, CJ Satu 96-Kaedah Well Microplate yang Mudah untuk Anggaran Jumlah KandunganPolifenol dalam Rumpai Laut. J. Appl. Phycol. 2006, 18, 445–450. [CrossRef]

93. Kamtekar, S.; Keer, V.; Patil, V. Anggaran kandungan fenolik, kandungan flavonoid, antioksidan dan aktiviti penghambatan alfa-amilase formulasi poliherba yang dipasarkan. J. Appl. Pharm. Sci. 2014, 4, 61.

94. Neto, R.; Marçal, C.; Queiros, A.; Abreu, M.; Silva, A.; Cardoso, S. Saringan Ulva rigida, Gracilaria sp., Fucus vesiculosus dan Saccharina latissima sebagai Bahan Berfungsi. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2987. [CrossRef]

95. Benzie, JIKA; Strain, JJ Keupayaan pengurangan ferik plasma (FRAP) sebagai ukuran "kuasa antioksidan": Ujian FRAP. Dubur.Biokim. 1996, 239, 70–76. [CrossRef]

96. Eun Lee, K.; Bharadwaj, S.; Yadava, U.; Gu Kang, S. Penilaian kafein sebagai perencat terhadap kolagenase, elastase, dan tyrosinasemenggunakan pendekatan siliko dan in vitro. J. Enzim Inhib. Med. Kimia. 2019, 34, 927–936. [CrossRef] [PubMed]