Kulit Jabuticaba (Myrciaria Jaboticaba) Sebagai Sumber Mampan Anthocyanin Dan Ellagitannin yang Dihantar Oleh Fosfolipid Vesikel Untuk Mengurangkan Tekanan Oksidatif dalam Keratinosit Manusia Bahagian 2

Sila hubungioscar.xiao@wecistanche.comuntuk maklumat lanjut

2.3. Kajian In Vitro dengan Keratinosit

2.3.1.Biokompatibiliti Vesikel

Kajian yang dilakukan untuk menilai sifat fizikokimia pemindahan, terutamanya yang diperkaya dengan polimer, mengesahkan kestabilan yang lebih besar dan saiz yang ideal untuk digunakan pada kulit. Sebarang perbezaan penting dikesan sebagai fungsi kepekatan polimer (1 atau 2 mg/mL). Untuk menilai ini, vesikel yang diubah suai dengan kepekatan polimer tertinggi (2 mg/mL) digunakan untuk melakukan kajian seterusnya. Biokompatibiliti mereka dinilai menggunakan keratinosit dan ekstrak dalam penyebaran akueus juga dinilai dan digunakan sebagai perbandingan. Keratinosit telah dipilih kerana ia adalah sel yang paling mewakili epidermis dan persediaan lapisan demi lapisan telah digunakan kerana dalam pembezaan khasnya, ia membentuk penghalang utama kulit, yang mengawal penghidratan kulit dan menghalang bahan eksogen daripada menembusi dan melaluinya. Keratinosit dirawat selama 48 jam dengan ekstrak dalam penyebaran atau dimasukkan ke dalam vesikel pada empat pencairan berbeza, selepas itu daya maju sel diukur (Rajah 3). Daya maju sel yang diinkubasi dengan ekstrak dalam penyebaran adalah ~ 88 peratus (m.s<0.05 versus="" the="" viability="" measured="" using="" extract="" loaded="" vesicles),="" indicating="" that="" the="" extract="" is="" not="" toxic.="" the="" viability="" of="" cells="" treated="" with="" extract-loaded="" transfersomes="" and="" hyaluronan-transfersomes="" at="" higher="" dilutions="" was~100%="" (p="">0.05 antara kumpulan ini). Rawatan dengan HEcellulose-transfersomes dan hyaluronan-transfersomes meningkatkan lagi daya maju sel. Semua formulasi adalah sangat biokompatibel tanpa mengira polimer dan pencairan yang digunakan. Malah, daya maju sel adalah sama dengan atau lebih tinggi daripada 100 peratus, malah mempamerkan kesan proliferatif yang berkaitan dengan pemuatan vesikel.

Sila klik di sini untuk mengetahui lebih lanjut

2.3.2. Kesan Perlindungan Ekstrak, dalam Penyerakan atau Dimuatkan dalam Vesikel, terhadap Kerosakan yang Dicetuskan dalam Keratinosit oleh Hidrogen Peroksida

Keratinosit ditekankan dengan hidrogen peroksida dan kemudian dirawat dengan ekstrak sama ada dalam penyebaran atau dimuatkan ke dalam pemindahan. Daya maju sel diukur pada 4 jam dan ini digunakan untuk menilai kesan perlindungan formulasi terhadap tegasan oksidatif (Rajah 4). Sampel telah dicairkan dengan medium sel untuk mencapai dua kepekatan berbeza (4 dan 0.4 ug/mL). Tekanan hidrogen peroksida menyebabkan kematian sel yang tinggi dan mengurangkan daya maju sehingga~50 peratus (hlm<0.05 versus="" the="" viability="" of="" cells="" treated="" with="" the="" extract="" in="" dispersion="" or="" loaded="" in="" vesicles)[35].="" hydrogen="" peroxide="" is="" considered="" one="" of="" the="" most="" dangerous="" oxidative="" molecules="" among="" the="" different="" reactive="" oxygen="" species,="" capable="" of="" promoting="" apoptosis="" and="" cell="" death.="" the="" treatment="" of="" stressed="" cells="" with="" the="" aqueous="" dispersion="" of="" the="" extract="" was="" capable="" of="" reducing="" the="" damaging="" effect="" of="" hydrogen="" peroxide="" as="" the="" viability="" increased="" up=""><0.05 versus="" the="" viability="" of="" cells="" treated="" with="" the="" extract="" loaded="" in="" hecelluose-transfersomes="" at="" a="" higher="" dilution="" and="" hyaluronan-transfersomes),="" although="" the="" complete="" restoration="" of="" normal="" conditions="" was="" not="" achieved="" (figure="" 4).="" treatment="" with="" the="" extract-loaded="" transfersomes="" protected="" the="" cell="" to="" the="" same="" extent="" as="" the="" extract="" in="" dispersion="" (~82%,p="">0.05 berbanding daya maju sel yang dirawat dengan serakan). Rawatan dengan hasil terbaik adalah ekstrak yang dimuatkan dengan HEcellulose-transfersomes (pada pencairan yang lebih tinggi) dan hyaluronan-transfersomes, yang mencapai daya maju ~104 peratus (p<0.05 versus="" the="" values="" of="" other="" treatments).="" the="" restored="" normal="" conditions="" and="" even="" slightly="" promoted="" cell="" proliferation,="" probably="" due="" to="" the="" synergic="" effect="" of="" the="" extract="" and="" the="" polymer-immobilized="" vesicles.="" the="" vesicle="" behavior="" was="" not="" affected="" by="" the="" dilution="" levels="" of="" the="">

2.3.3. Kesan Penyembuhan Luka In Vitro

Ujian calar in vitro dilakukan dengan monolayer keratinosit untuk mengesahkan keupayaan ekstrak dalam penyebaran akueus atau dimasukkan ke dalam vesikel untuk merangsang percambahan dan penghijrahan sel. Vesikel kosong tidak diuji kerana dalam kajian terdahulu tiada peningkatan dalam penyembuhan luka dikesan apabila hyalurosom kosong digunakan [37]. Penutupan luka yang dilakukan dipantau selama 48 jam (Rajah 5) dan peratusan penutupan dikira dengan mengukur kawasan lesi (Rajah 6). Penutupan luka sel yang tidak dirawat berlaku dengan sangat perlahan-13 peratus pada 24 jam, 28 peratus pada 36 jam, dan hanya 40 peratus pada 48 jam. Rawatan dengan ekstrak dalam serakan air sedikit sebanyak menambah baik proses dan membawa penutupan pada 48 jam kepada 50 peratus. Rawatan dengan vesikel yang dimuatkan ekstrak pada 48 jam mencapai penutupan 90 peratus apabila menggunakan transfersomes dan HEcellulose-transfersomes dan sekitar 100 peratus penutupan apabila menggunakan hyaluronan-transfersomes. Seperti yang kita lihat, penutupan luka hampir selesai, mengesahkan sifat memulihkan hyaluronan-transfersomes yang dimuatkan ekstrak.

Keputusan keseluruhan kami mengesahkan biokompatibiliti tinggi hyaluronan-transfersomes, yang juga paling berkesan untuk merangsang percambahan dan penghijrahan sel kulit dan mengatasi kerosakan yang disebabkan pada kulit oleh tekanan oksidatif.

3. Bahan dan Kaedah 3.1. Bahan

Lipoid S75 (terdiri daripada~70 peratus fosfatidilkolin soya, 9 peratus fosfatidiletanolamin dan 3 peratus liso-phosphatidylcholine) telah dibeli daripada Lipoid GmbH(Ludwigshafen, Ger-many).Natrium hyaluronat dengan berat molekul rendah (200-400 kDa) dan polidispersiti 1.4 Mw/Mn, telah dibeli daripada DSM Nutritional Products AG Branch Pentapharm (Switzerland). Antara 80, gliserol, radikal DPPH (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil), ferik klorida heksahidrat, asid gallik, klorogenik dan askorbik, katekin, garam tetrazolium, 3-(4,{ {15}}dimethylthiazol-2-vl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide(MTT), quercetin, Neosporin, reagen phenol Folin-Ciocalteu,2,4,6-tris( 2-pyridyl)-S-triazine(TPTZ) dan pvrocatechol violet telah dibeli daripada Sigma-Aldrich (Milan, Itali). Potassium hexacyanoferrate (ⅢI) diperolehi daripada Merck(Darmstadt, Jerman). Natrium asetat kontang, kuprum sulfat pentahidrat dan kuprum klorida dihidrat diperoleh daripada VWR Chemi-cals BDH⑧(Frankfurt, Jerman). Sianidin 3-O-glucoside ( Lebih daripada atau sama dengan 95 peratus )dan delphinidin 3-O-glucoside( Lebih daripada atau sama dengan 95 peratus ) telah dibeli daripada Extrasynthese(Lyon, Perancis). Asid asetik glasier dan asid fosforik (85 peratus) diperoleh daripada JTBaker (Mallinckrodt Baker Inc., Utrecht, Belanda). Semua reagen dan plastik untuk kultur sel telah dibeli daripada Life Technologies Europe (Monza, Itali).

3.2. Jabuticaba Pees: Pengekstrakan, Pencirian Kimia, dan Aktiviti Antioksidan

Buah jabuticaba (Myrciaria jabuticaba (Vell.)O.Berg)cv. Sabara dituai pada peringkat kematangan masak di bandar Araucaria, Paranå, Brazil（koordinat geografi∶25 darjah 2924.7" S49 darjah 2637.8"W) pada Disember 2018. Buah-buahan telah dibasuh dan dibersihkan (NaOCl pada 100 mg/L/15 min), dibilas, dan dipulangkan secara manual. Kulit dikeringkan pada 35 darjah darjah selama 50 jam, dikisar hingga mencapai 42 Tyler mesh, dan diekstrak dalam pengekstrak pelarut dipercepatkan (ASE-350, Dionex, Sunnyvale, CA, USA), menggunakan tekanan 100 bar(98.7 atm) dalam dua kitaran pengekstrakan pada 50 darjah . Air berasid dengan asid sitrik (pH 2.10) digunakan sebagai pelarut dan pengekstrakan diulang empat kali. Kemudian, ekstrak ditapis menggunakan kertas kualitatif dan dikeringkan di bawah vakum selama 120 jam. Berikutan ini, hasil pengekstrakan, dinyatakan sebagai peratusan, dikira mengenai bahan mentah yang digunakan dalam prosedur.

Cistanche boleh meningkatkan imuniti

Jumlah kandungan fenolik (TPC, mg bersamaan asid gallik setiap 100 g, mg GAE/100 g) jumlah tannin pekat (TCT, mg bersamaan katekin setiap 100 g, mg CE/100 g), jumlah flavonoid(TF, mg CE /100 g)dan jumlah kandungan orto-difenol (TOD, mg asid klorogenik bersamaan setiap 100 g, mg CAE/100 g) diukur dalam tiga kali ganda dengan menggunakan spektrofotometri UV-Vis mengikut prosedur yang diterangkan sepenuhnya oleh do Carmo et al. [20].

Antosianin (cyanidin {{0}}O-glucoside dan delphinidin 3-O-glucoside) telah dikira oleh kromatografi cecair berprestasi tinggi (HPLC) menggunakan Agilent 110{{37} }(Agilent Technologies Inc., Espoo, Finland) peranti yang dilengkapi dengan pengesanan tatasusunan diod (DAD). Pengasingan dilakukan menggunakan lajur Gemini C18 （150 mm×4.6 mm, 5 μm） dengan elusi kecerunan asetonitril yang diasidkan dengan asid formik pada 5 peratus . Jumlah kandungan ellagitannin ditentukan selepas hidrolisis asid, menurut Mattila dan Kumpulainen [38], dan asid gallik ditentukan menggunakan lajur Inertsil ODS-3 （150 mm ×4.0 mm , 3 μm）dengan elusi kecerunan asetonitril kepada 50 mmol/L H3PO4(pH 2.5). Analisis dilakukan dalam tiga kali ganda dan keputusan dinyatakan sebagai mg/100 g. Kromatografi cecair prestasi ultra tinggi (UHPLC) digabungkan dengan spektrometri jisim resolusi tinggi (MS) telah digunakan untuk pencirian ellagitannin dan antosianin utama. Spektrometer jisim Acquity UPLC-Xevo G2 QTOF (Waters, Milford, MA, USA）dilengkapi dengan lajur Waters Acquity BEH C18 （1.7 μm, 2.1 mm × 150 mm） dan pengasingan dilakukan menggunakan kecerunan asetonitril ke dalam air berasid. dengan 0.1 peratus asid formik, menurut Santos et al. [39]. Kadar alir ialah 0.55 mL/min, suhu ketuhar lajur ialah 45 darjah dan isipadu suntikan ialah 1.0 μL. Antara muka penyembur elektro (ESI) dalam negatif dan mod positif telah digunakan dengan voltan kapilari sebanyak -1 kV dan ditambah 0.5 kV, masing-masing. Argon digunakan sebagai gas perlanggaran. Analisis MS telah dijalankan oleh model data centroid pemerolehan bebas data (MSE) dalam imbasan penuh m /z 50-1500 dengan masa imbasan 0.2 s. Dalam fungsi MSE, ion prekursor MS telah dipecahkan menggunakan tenaga perlanggaran tinggi yang dinaikkan daripada 25 kepada 45 V.

Aktiviti antioksidan ekstrak telah dianalisis dalam tiga kali ganda dengan menggunakan ujian yang berbeza: aktiviti penghapusan radikal bebas berhubung dengan radikal DPPH, kuasa antioksidan penurun ferik (FRAP), kapasiti antioksidan pengurangan ion cupric (CUPRAC), kuasa pengurangan, dan Cu2 ditambah keupayaan kelat. Keputusan dinyatakan sebagai mg GAE/100 g (mengurangkan kuasa), mg asid askorbik bersamaan setiap 100 g, mg AAE/100 g (DPPH, FRAP, dan CUPRAC), dan mg EDTA bersamaan/100 g (kelasi logam), masing-masing . Semua kaedah yang digunakan telah diterangkan secara mendalam sebelum ini oleh do Carmo et al. dan Fidelis et al. [9,20].

3.3. Penyediaan Vesikel

Pemindahan, pemindahan yang diperkaya dengan hidroksietilselulosa (HEcellulose-thansferoms), dan pemindahan yang diperkaya natrium hyaluronat (hyaluronan-transfersomes) telah disediakan dengan menyebarkan fosfolipid (S75, 180 mg/mL), Tween 80(20 mg/mL), ekstrak (40 mg/mL) dan polimer (hydroxyethylcellulose atau sodium hyaluronate 1 dan 2 mg/mL), apabila sesuai, dalam air dan biarkan adunan terhidrat selama beberapa jam. Berikutan ini, serakan telah disonikasikan (4 kitaran 2 pada 5 off amplitud 15.0μ), menunggu 5 minit antara setiap kitaran untuk menggalakkan penyejukan dan mengelakkan terlalu panas sampel. Sonikator Soniprep 150 berprestasi tinggi (MSE Crowley, London, UK) telah digunakan untuk menyonikan semua serakan untuk mendapatkan sistem homogen dengan saiz yang kecil [15]. Prosedur ini mengelakkan kehilangan komponen yang digunakan untuk penyediaan, yang membawa kepada pembentukan vesikel berprestasi yang mampu menggabungkan jumlah ekstrak yang tinggi.

3.4. Pencirian Vesikel

Purata diameter dan indeks polidispersiti (ukuran tanpa dimensi bagi keluasan taburan saiz) vesikel diukur dengan spektroskopi korelasi foton menggunakan Zetasizer Ultra (Instrumen Malvern, UK). Peralatan yang sama digunakan untuk mengukur potensi zeta vesikel dengan mengukur mobiliti elektroforesis zarah [40]. Sampel telah dicairkan dengan sesuai sebelum pengukuran untuk menjadi jelas secara optikal dan mengelakkan pengurangan cahaya berselerak yang boleh dikesan. Untuk menilai jumlah ekstrak yang sebenarnya dimasukkan ke dalam vesikel, penyebaran telah disucikan daripada ekstrak yang tidak digabungkan dengan dialisis. Penyerakan vesikel (1 mL) dimasukkan ke dalam tiub dialisis polikarbonat (Spectra/Pormembranes:12-14 pemotongan kDa MW, dengan liang 3 nm; Spectrum Laboratories Inc., Rancho Dominguez, CA, USA) dan direndam dalam air suling (2 L) pada 25 darjah selama 2 jam di bawah kacau. Air itu disegarkan selepas satu jam, dengan itu menggunakan 4 L air untuk melarutkan molekul bioaktif yang tidak digabungkan dalam 1 mL penyebaran vesikel (40 mg). Jumlah ekstrak dalam ampaian vesikel sebelum dan selepas dialisis dikira mengukur aktiviti antioksidannya menggunakan ujian DPPH. Kecekapan pemerangkapan ekstrak di dalam vesikel dikira sebagai nisbah peratusan antara aktiviti antioksidan sampel sebelum dan selepas proses penulenan [41-43].

3.5. Kestabilan Vesikel pada Storan

Kestabilan vesikel dalam serakan dinilai dengan memantau saiz puratanya, indeks polidispersiti, dan cas permukaan selama 90 hari sambil mengekalkan serakan pada suhu bilik (25± 1 darjah).

3.6.Pengukuran Aktiviti Antioksidan Sampel Menggunakan Ujian Kolorimetrik DPPH Aktiviti antioksidan ekstrak kulit jabuticaba yang dimuatkan ke dalam vesikel diukur sebagai fungsi keupayaannya untuk menyapu DPPH. Penyerakan（10 μL） telah dicairkan （1∶100）dengan larutan metanol DPPH(0.4 ug/mL). Sampel yang dicairkan disimpan pada suhu bilik dan dalam gelap selama 30 minit, kemudian penyerapan larutan diukur pada 517 nm menggunakan spektrofotometer UV. Aktiviti antioksidan rumusan dikira mengikut Persamaan (1): (1)Peratus aktiviti antioksidan =[(ABSDPPH-ABSample)/ABSpPPH]×100

3.7.Biokompatibiliti dan Kesan Perlindungan Sampel terhadap Tekanan Oksidatif dalam Keratinosit

Keratinosit manusia yang diabadikan (HaCaT) ditanam sebagai lapisan tunggal pada 37 darjah , dengan 100 peratus kelembapan dan 5 peratus CO2 menggunakan glukosa tinggi Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) ditambah dengan serum lembu janin, penisilin dan streptomycin sebagai medium pertumbuhan. Untuk menilai biokompatibiliti formulasi, sel telah disemai ke dalam 96-plat perigi pada ketumpatan 7.5 × 10 sel darjah/telaga. Selepas 24 jam, sel telah dirawat selama 48 jam dengan ekstrak jabuticaba dalam penyebaran akueus atau dimuatkan dalam vesikel yang dicairkan dengan betul dengan DMEM untuk mencapai kepekatan ekstrak yang berbeza (40, 4, 0.4, dan 0.04 ug/mL). Pada penghujung pengeraman, MTT [3(4,5-dimetil thiazolyl-2)-2, 5-diphenyltetrazolium bromide]（100 μL, 0.5 mg/mL kepekatan akhir ） telah ditambah pada setiap telaga, dan, selepas tiga jam, kristal formazan yang terbentuk telah dilarutkan dengan dimetil sulfoksida. Penyerapan setiap telaga diukur pada 570 nm menggunakan pembaca plat mikro (Synergy 4 Reader, Instrumen BioTek, AHSI SpA, Bernareggio, Itali). Semua eksperimen diulang sekurang-kurangnya tiga kali, setiap kali dalam tiga kali ganda. Keputusan ditunjukkan sebagai peratus daya maju sel berbanding dengan sel kawalan yang tidak dirawat (100 peratus daya maju).

Kesan perlindungan in vitro formulasi terhadap kerosakan yang disebabkan oleh tekanan oksidatif telah dinilai juga. Sel telah disemai ke dalam {{0}}plat perigi pada ketumpatan 7.5× 10sel/telaga. Selepas 24 jam pengeraman, sel ditekankan dengan hidrogen peroksida (30 peratus dicairkan 1:40,000 v/o dengan PBS) dan dirawat dengan ekstrak dalam penyebaran akueus atau dimuatkan dalam vesikel dan dicairkan untuk mencapai dua kepekatan berbeza (4 dan 0.4 ug/mL,). Sel yang ditekankan dengan hidrogen peroksida sahaja digunakan sebagai kawalan negatif, manakala sel yang tidak dirawat digunakan sebagai kawalan positif. Selepas 4 jam pengeraman, sel telah dibasuh dengan medium segar dan daya majunya ditentukan oleh ujian MTT. Keputusan dilaporkan sebagai peratusan sel yang tidak dirawat (100 peratus daya maju).

3.8. Sifat Penyembuhan Luka In Vitro

Keupayaan ekstrak kulit jabuticaba yang dimuatkan ke dalam vesikel untuk mengubah suai lesi kulit dan menggalakkan penyembuhannya telah dinilai dengan mengukur pengembangan sel pada lesi dalam monolayer sel. Sel-sel telah dikultur dalam 6 plat telaga sehingga monolayer lengkap dan homogen dicapai. Luka linear dihasilkan menggunakan hujung pipet plastik steril. Serpihan sel yang bertaburan dikeluarkan dengan mencuci lembut dengan medium segar. Penyerakan berair ekstrak atau vesikel yang dimuatkan ekstrak telah dicairkan dengan medium sel sehingga 4 ug/mL ekstrak dan digunakan untuk merawat monolayers sel yang lesi. Lesi sel telah diperhatikan, dan imej telah ditangkap pada 24, 36, dan 48 jam pengeraman menggunakan mikroskop optik dengan objektif 10 ×. Sel yang tidak dirawat digunakan sebagai kawalan negatif. Lesi kawasan dalam imej yang ditangkap diukur oleh perisian J imej Java (http://rsb.info.nih.gov, diakses pada April-Jun 2021). Penutupan luka dikira menggunakan Persamaan (2):

di mana ao ialah kawasan yang cedera sejurus selepas menggaru, dan a ialah kawasan yang cedera diukur pada 24, 36, dan 48 h [44].

3.9. Analisis statistik

Keputusan dinyatakan sebagai min ± sisihan piawai dan keertian telah diuji pada 0.05 tahap kebarangkalian (p). Untuk saiz, potensi zeta, kelikatan, pengumpulan dadah, dan sitotoksisiti, analisis varians sehala (ANOVA) digunakan untuk membuktikan perbezaan statistik antara kumpulan diikuti dengan ujian Tukey, manakala ujian-t Pelajar digunakan untuk perbandingan antara dua sampel menggunakan XLStatistic. untuk Excel.

4. Kesimpulan

Ekstrak kulit jabuticaba terliofil telah digabungkan ke dalam pemindahan dan polimer (hidroksietilselulosa dan natrium hyaluronat) yang diperkaya pemindahan dengan tujuan untuk menstabilkan ekstrak dan meningkatkan keberkesanan terapeutiknya. Vesikel yang diperolehi bersaiz kecil dan tersebar secara homogen. Penambahan kedua-dua polimer hanya membawa kepada pembentukan vesikel yang lebih besar sedikit tanpa perbezaan antara kepekatan polimer yang digunakan. Vesikel yang diperkaya polimer nampaknya sesuai untuk pentadbiran topikal dan mampu menggabungkan ekstrak kaya bioaktif dalam jumlah yang tinggi. Khususnya, gabungan fosfolipid, Tween 80, dan natrium hyaluronat untuk mendapatkan Hyaluronan-transfersomes, telah dipilih sebagai formulasi terbaik dari segi kestabilan dan keupayaan untuk berinteraksi dengan keratinosit, kerana hanya vesikel ini dapat mengatasi kerosakan dengan berkesan. diinduksi dalam sel apabila menggunakan hidrogen peroksida dan untuk menggalakkan penyembuhan luka dalam keratinosit manusia. Secara keseluruhan, keputusan kami mencadangkan bahawa hyaluronan-transfersomes mungkin mewakili sistem yang menjanjikan untuk rawatan penyakit kulit atau luka kulit yang berkaitan dengan tekanan oksidatif. Selain itu, kami menunjukkan buat pertama kalinya penggunaan ekstrak kulit jabuticaba dalam sistem penghantaran dermatologi.

Sumbangan Pengarang:DG, MLM, MM: konseptualisasi, analisis formal, penyusunan data, penulisan dan semakan; IC, MA, JH: analisis dan penulisan formal. Semua pengarang telah membaca dan bersetuju dengan versi manuskrip yang diterbitkan.

Pembiayaan:Penyelidikan ini tidak menerima pembiayaan luar. Penyata Lembaga Semakan Institusi: Tidak berkenaan. Kenyataan Persetujuan Termaklum: Tidak berkenaan.

Penyata Ketersediaan Data:Data mentah tersedia dan boleh ditanya terus kepada pengarang.

Konflik Kepentingan:Penulis mengisytiharkan tiada konflik kepentingan.

Ketersediaan Sampel:Sampel ekstrak kulit jaboticaba boleh didapati daripada penulis.

Artikel ini diekstrak daripada Molecules 2021, 26, 6697. https://doi.org/10.3390/molecules26216697 https://www.mdpi.com/journal/molecules