Kajian Mengenai Pembuatan Bahan Semula Jadi Berkesan Berdasarkan Penapaian Ekstrak Schisandra Chinensis
Apr 14, 2023
Tujuan:Dalam kajian ini, ekstrak Schisandra chinensis (SCE) berkecekapan tinggi yang dihasilkan melalui penapaian mikroorganisma berkesan (EM) digunakan sebagai bahan antioksida dalam penyediaan produk kosmetik.
Menurut kajian yang berkaitan,cistancheadalah herba biasa yang dikenali sebagai "herba ajaib yang memanjangkan hayat". Komponen utamanya ialahcistanoside, yang mempunyai pelbagai kesan sepertiantioksidan, anti-radang,danpromosi fungsi imun. Mekanisme antara cistanche dan pemutihan kulit terletak pada kesan antioksidancistancheglikosida. Melanin dalam kulit manusia dihasilkan oleh pengoksidaan tirosin yang dimangkin olehTyrosinase, dan tindak balas pengoksidaan memerlukan penyertaan oksigen, jadi radikal bebas oksigen dalam badan menjadi faktor penting yang mempengaruhi pengeluaran melanin. Cistanche mengandungi cistanoside, yang merupakan antioksidan dan boleh mengurangkan penjanaan radikal bebas dalam badan, dengan itumenghalang pengeluaran melanin.

Klik Di Mana Saya Boleh Beli Cistanche
Untuk maklumat lanjut:
david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

pengenalan
Dalam beberapa tahun kebelakangan ini, peningkatan dan mengejar taraf hidup yang tinggi telah menyebabkan banyak masalah yang menjejaskan kesihatan orang ramai. Antaranya, produk kosmetik adalah contoh tertentu yang perlu disiasat dengan teliti. Penggunaan bahan kimia sintetik sebagai bahan utama produk kosmetik membawa kepada banyak hasil negatif, seperti ketoksikan dan kos yang tinggi. Inilah sebab mengapa penyiasatan produk semula jadi untuk aplikasi kosmetik telah menarik banyak minat daripada ramai penyelidik. Schisandra chinensis (SC) ialah tumbuhan ubatan dan boleh dimakan yang mempunyai lima rasa (manis, masam, pahit, masin, dan pedas),1,2 dan digunakan secara meluas dalam banyak industri makanan, minuman, dan herba, dsb.3,4 SC mengandungi banyak sebatian bioaktif, seperti domain, asid malik, dan asid sitrik, dan boleh digunakan dengan berkesan untuk merawat batuk dan asma.5 Selain itu, ia boleh digunakan dalam industri makanan dan kosmetik kerana antibakteria yang terkenal dan kebolehan antioksidan. Tambahan pula, ia mempunyai kestabilan haba yang sangat baik dan boleh digunakan dalam kosmetik dan makanan yang tidak menjejaskan kesihatan manusia.6 Penapaian merujuk kepada proses penguraian bahan organik menggunakan enzim mikroorganisma dan berasal daripada perkataan Latin fervent. 7 Ia telah digunakan dalam pelbagai cara dan bidang yang berbeza, seperti makanan, ubat-ubatan, dan kosmetik.7 Penapaian makanan melalui tindakan enzimatik mikroorganisma secara tradisinya digunakan dalam proses pembuatan untuk meningkatkan rasa dan memusnahkan toksin, dan juga mempunyai kesan menggalakkan biomolekul.8,9 Mikroorganisma Berkesan (EM) ialah mikroorganisma berguna yang telah dibangunkan pada tahun 1982.10 EM pada asalnya dibangunkan untuk digunakan dalam pertanian semula jadi dan organik. Selepas itu, skop terpakainya telah diperluaskan secara beransur-ansur dan ia biasanya digunakan di negara-negara Asia, Rusia, dan Amerika Syarikat.11 Pada mulanya, penyelesaian EM telah dibangunkan daripada 80 spesies 10 genera dalam 5 keluarga; namun, ia adalah satu proses yang sangat kompleks. Oleh itu, EM kemudiannya hanya dibangunkan oleh beberapa organisma utama, seperti bakteria fotosintesis, bakteria asid laktik, kulat, yis, dan actinomycetes.12 Mengenai aplikasi penapaian, ia ditapai dalam keadaan anaerobik fakultatif, jadi produk sintesisnya, seperti vitamin dan pigmen karotena sebagai antioksidan yang kuat untuk menghalang pereputan bahan organik.13 Asid amino dan asid organik yang terhasil ditukar kepada protein dan gula masing-masing dan kemudian diserap dengan segera oleh tumbuhan. Ini meningkatkan kecekapan kedua-dua sintesis dan penggunaan makanan tumbuhan. EM pada asalnya dibangunkan untuk digunakan dalam pertanian organik semula jadi, tetapi kini digunakan dalam pelbagai bidang seperti pembinaan, perubatan dan industri kosmetik.14–16

Bahan dan Kaedah
Bahan
Pengekstrakan SC
Penyediaan Kepekatan Ekstrak Berbeza
Analisis Unsur Mikro
Dengan kaedah Food Code,{{0}}.0 g sampel telah dilarutkan dalam asid nitrik 100 mL dengan air DI pada 100 darjah . Kemudian, jumlah unsur surih dalam sampel diukur dan dianalisis dengan Penganalisis Unsur (Vario EL, Jerman).

Pengukuran Kandungan Polifenol
Kandungan polifenol setiap gram sampel diukur dengan kaedah Folin-Denis.18 Oleh itu, 100 μL ekstrak dan 2 peratus berat Na2CO3 dicampur dalam tiub EP. Tiub EP disimpan pada suhu bilik selama 2 minit untuk tindak balas. Selepas itu, 50 peratus reagen fenol Folin–Ciocalteu telah ditambah ke dalam tiub. Sampel dimasukkan ke dalam pengadun vorteks pada suhu bilik selama 30 minit dan kemudian dianalisis dengan spektrofotometer UV-Vis pada 750 nm.
Pengukuran Flavonoid
Jumlah kandungan flavonoid setiap gram ekstrak diukur dengan kolorimetri dietilena glikol.19 Oleh itu, 100 μL ekstrak dan 100 μL 1.0 N NaOH telah ditambah ke dalam tiub EP dan dicampur menggunakan pengadun pusaran. Selepas mencampurkan, larutan disimpan pada suhu 30 darjah selama 1.0 jam untuk tindak balas. Hasil tindak balas dianalisis oleh spektrofotometer UV-Vis pada 420 nm.
Pengukuran Pemusnahan Radikal Bebas
Penghapusan radikal bebas oleh 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) diukur dengan kaedah Blois yang diubah suai.20 Dalam konteks ini, penampan asas Trizma–HCl 0.1 M (Tris penimbal, pH 7.4) dan 500 mM DPPH pada mulanya disediakan dengan metanol. Butylated hydroxytoluene (BHT) dan butylated hydroxyanisole (BHA) telah dipilih sebagai standard untuk eksperimen kawalan. Kemudian, 100 μL sampel ekstrak dan 400 μL penimbal Tris dicampur dalam tiub EP, diikuti dengan penambahan 500 μL larutan DPPH. Campuran disimpan di dalam bilik gelap selama 20 minit, kemudian dianalisis dengan spektrofotometer UV-Vis pada 517 nm. Dalam eksperimen kawalan, 100 μL BHT dan BHA telah ditambah dan bukannya sampel ekstrak. Dalam kumpulan bukan aditif, 100 μL penimbal Tris telah ditambah ke dalam tiub EP dan bukannya sampel ekstrak. Pengukuran keupayaan pendermaan elektron ditunjukkan seperti berikut:21

Pengukuran Aktiviti Penghapusan Nitrit
Aktiviti penghapusan nitrit diukur menggunakan kaedah diubah suai yang dibangunkan oleh Kim et al.22,23 Khususnya, 0.3 mL sampel yang diekstrak dan 0.1 mL 1.0 larutan mM NaNO2, 0.2 M sitrat penimbal–HCl pada pH 2.5 dicampur untuk mendapatkan isipadu akhir 1.0 mL. Campuran kemudiannya bertindak balas pada 37 darjah selama 1.0 h. Selepas itu, ia dicampur dengan 0.4 mL reagen Griess (30 peratus larutan CH3COOH yang mengandungi asid sulfanilik (1.0 peratus berat ): naftilamin (1 peratus berat )) dan 3 .0 mL larutan CH3COOH (2.0 peratus berat ). Kemudian, tindak balas berlaku pada suhu bilik selama 15 minit.
![]()
Pengukuran Aktiviti Seperti Superoxide Dismutase (SODA)

Pengukuran Aktiviti Perencatan Tirosinase
Aktiviti perencatan tyrosinase diukur dengan versi kaedah yang diubah suai yang dibentangkan oleh Masamoto et al.25 Untuk mengukur sifat penyahaktifan tyrosinase cendawan dalam keadaan vitro, 0.3 mL 2.5 mM 3.4 dihydroxy-phenylalanine (L-DOPA). ), {{10}}.{{20}}5 mL sampel yang diekstrak, dan larutan penimbal fosfat 0.1 M (pH 6.8, jumlah isipadu 1.5 mL) dicampur menggunakan pusaran pengadun, dan kemudian pra-inkubasi pada 25 darjah . Kemudian, 0.05 mL cendawan tyrosinase pada 1380 unit·mL−1 (Sigma Co., USA) telah ditambah dan kemudian dicampur menggunakan pengadun vorteks. Selepas itu, tindak balas dilakukan pada 25 darjah selama 2.0 min.

di mana A ialah nilai penyerapan antara {{0}}.5 dan 1 min larutan tindak balas tanpa sampel, diukur pada 475 nm oleh spektrofotometer UV-Vis; dan B ialah nilai penyerapan antara 0.5 dan 1.0 min larutan tindak balas dengan sampel, diukur pada 475 nm oleh spektrofotometer UV-Vis.
Penyediaan Bahan Krim
Formula krim, berdasarkan air suling, minyak yang diekstrak, dan bahan tambahan, disediakan seperti yang disenaraikan dalam Jadual 1. Air, bahan tambahan, dan minyak ditimbang dan kemudian dipanaskan pada 80 darjah dalam tab mandi air. Air ditambah perlahan-lahan dan dicampurkan dengan kuat dengan minyak dalam pengadun mini (DS-1800; Korea). Krim A disediakan tanpa minyak yang diekstrak. Krim B, C, D, E, dan F masing-masing mengandungi 1, 5, 10, 20, dan 40 mg·mL−1 ekstrak SC (SCE). Krim G, H, I, J, dan K mengandungi 1, 5, 10, 20, dan 40 mg·mL−1 penapaian SCE (SCEF).

Penilaian Keselamatan
Penilaian Kestabilan


Keputusan dan perbincangan
Analisis Unsur Mikro
Keputusan analisis spektrometri jisim plasma (ICP) gandingan induktif bagi SCE ditunjukkan dalam Jadual 2, yang menunjukkan bahawa 1.0 mg·mL−1 daripada SCE mengandungi 23.71, 0.42, dan 0.03 mg·kg−1 K, Fe dan Se, masing-masing. Apabila jumlah SCE meningkat, kandungan unsur surih ini meningkat. Dalam hal ini, peningkatan dalam K adalah dominan, dan peningkatan dalam Mn, Fe, Cu, dan Zn adalah tidak ketara. Kandungan Se kekal sama tanpa mengira kepekatan SCE. Unsur surih ini membantu tindakan banyak bahan aktif fisiologi di dalam dan di luar tubuh manusia dan memainkan peranan penting, termasuk aktiviti pengoksidaan dan imuniti.
Pengukuran Ekstrak dan Kandungan Flavonoid dan Polifenolnya
Kandungan SCE ialah 27.91 berat peratus dalam 100 g SC. Pengekstrakan memberikan hasil yang sama apabila prosedur dilakukan dalam air dan etanol. Walau bagaimanapun, hasil ekstrak adalah lebih rendah daripada kertas sebelumnya.26,27 Ini disebabkan oleh perbezaan di tempat di mana SC ditanam, serta keadaan kultur dan kaedah pengekstrakan.26 Kandungan polifenol adalah ditunjukkan dalam Jadual 3. Ekstrak SCE biasa pada 1.0 mg·mL−1 menyediakan 1.53±0.02 mg·g−1 polifenol, manakala jumlah yang sama daripada EM SCEF menyediakan kandungan polifenol yang lebih tinggi (20.84±0.04 mg·g−1) berbanding ekstrak tidak ditapai. Keputusan pengekstrakan untuk EM SCEF pada 5, 10, 20, dan 40 mg·mL−1 ialah 25.82±0.04, 29.13±0.05, 42.07±0.05, dan 59.22±0.09 mg·g−1.

Pengukuran Pemusnahan Radikal Bebas
Radikal bebas dalam badan boleh menggalakkan penuaan biologi, dengan bertindak balas dengan lipid dan protein. Untuk menghapuskan fenomena ini, banyak kajian telah menyiasat produk semula jadi.31 Kaedah ujian penghapusan radikal DPPH digunakan dalam banyak produk semula jadi untuk pengukuran antioksidan menggunakan keupayaan antioksidan pendermaan elektron.32–34 Keputusan kesan antioksidan dalam SCE dan Kumpulan EM SCEF ditunjukkan dalam Rajah 1. Dalam kes keupayaan penghapusan radikal DPPH SCE, kerana kepekatan berbeza daripada 1.0, 10, hingga 40 mg·mL−1, keupayaan antioksidan meningkat daripada 37 peratus, 72 peratus, kepada 74 peratus. Kumpulan EM SCEF, menunjukkan keupayaan antioksidan 63 peratus , 67 peratus dan 79 peratus pada kepekatan masing-masing 1.0, 10, dan 40 mg·mL−1. Dalam kumpulan EM SCEF, perubahan kecil dalam keupayaan antioksidan dengan kepekatan nampaknya disebabkan oleh tindak balas antara EM SCEF dan mikrob untuk menghasilkan bahan antioksidan. Keupayaan antioksidan SC dibandingkan dengan beberapa antioksidan yang terkenal, seperti BHT (89 peratus) dan BHA (88 peratus). Didapati bahawa keupayaan penghapusan radikal bebas SC tidak jauh berbeza dengan mereka. Di samping itu, SCEF mempunyai keupayaan penghapusan radikal yang lebih tinggi daripada SCE, walaupun pada kepekatan rendah. Ini bermakna apabila larutan aktif SC dan EM bertindak balas antara satu sama lain, mikrob menghasilkan bahan aktif secara fisiologi yang mempunyai keupayaan antioksidan. Oleh itu, adalah mungkin untuk menghasilkan bahan yang mengandungi tahap antioksidan yang lebih tinggi dengan jumlah EM SCEF yang lebih rendah daripada SCE. Kami membuat kesimpulan bahawa ini boleh menyelesaikan masalah dos dalam pembuatan kosmetik, dan pada masa yang sama meningkatkan aspek fungsi produk kosmetik yang mengandungi bahan semula jadi yang berasal daripada tumbuh-tumbuhan.

Pengukuran Aktiviti Penghapusan Nitrit
Nitrit bertindak balas dengan amina sekunder (sebatian kimia di mana dua atom hidrogen ammonia digantikan dengan kumpulan berfungsi hidrokarbon R), menghasilkan nitrosamin, karsinogen yang terkenal; dalam erti kata lain, nitrit bertindak sebagai prekursor untuk nitrosamine. Oleh itu, pembentukan nitrosamin boleh dihalang dengan berkesan dengan mengeluarkan nitrat.35 Jika kereaktifan antara sampel untuk analisis dan nitrit adalah tinggi, nitrit akan dikeluarkan kerana ia bertindak balas dalam keadaan terion, yang membawa kepada perencatan pembentukan nitrosamin. Ini terpakai sama rata kepada bahan lain yang wujud dalam bentuk ion atau elektron, dan kereaktifan tinggi sampel adalah bersamaan atau dinilai sebagai aktiviti tinggi penghapusan nitrit dan antioksida. Semakin besar jumlah sebatian fenol dalam sampel, semakin kuat tindak balas penyingkiran nitrit berlaku dalam julat pH yang lebih rendah, dan, secara buruknya, kesan penyingkiran berkurangan dalam julat pH atas.36 Jadual 5 menunjukkan bahawa aktiviti pembersihan nitrit. daripada SCE ialah 15 peratus pada 1 mg·mL−1, 40 peratus pada 10 mg·mL−1, dan 89 peratus pada 40 mg·mL−1. Sebaliknya, SCEF menunjukkan aktiviti penghapusan nitrit sebanyak 51 peratus pada 1 mg·mL−1, 69 peratus pada 10 mg·mL−1, dan 98 peratus pada 40 mg·mL−1. Daripada ujian ini, diperhatikan bahawa apabila kepekatan kedua-dua kumpulan meningkat, aktiviti mengais juga meningkat. Di samping itu, SCEF lebih unggul daripada SC dalam aktiviti penghapusan nitritnya, yang serupa dengan keputusan eksperimen lain. Pada kepekatan 1.0 mg·mL−1, perbezaan dalam aktiviti scavenging ialah 40 mg·mL−1, yang terbesar antara kepekatan yang berbeza, dan jurang mengecil apabila kepekatan meningkat. Daripada eksperimen perbandingan ini, melalui proses penapaian EM, kesan penghapusan nitrit SC, yang dinilai sebagai agak baik, bertambah baik. Fenomena ini boleh dikaitkan dengan proses penapaian yang menghasilkan lebih banyak bahan aktif secara biologi, yang seterusnya, membawa kepada peningkatan perencatan pembentukan nitrosamin, serta banyak fenol, sebagai bahan tumbuhan mentah, juga menyumbang kepada tindak balas penghapusan nitrit yang berkesan. .


Pengukuran SODA
SOD ialah antioksidan enzimatik yang boleh menyahtoksik dan menyekat ketoksikan O2, H2O2, peroksida, radikal OH, dsb.37,38 SODA ditunjukkan dalam Jadual 6 untuk kepekatan SCE (atau SCEF) 1.0, 1 0, dan 40 mg·mL−1. Kumpulan SCE mempunyai SODA sebanyak 6 peratus , 18 peratus dan 41 peratus , manakala kumpulan EM SCEF mempunyai SODA sebanyak 28 peratus , 32 peratus dan 43 peratus apabila kepekatan meningkat daripada 1 hingga 40 mg·mL−1. Untuk menganalisis perbezaan aktiviti kedua-dua kumpulan, perbezaan nilai SODA adalah lebih tinggi pada kepekatan rendah SCE dan SCEF (1.0 mg·mL−1) dan lebih kecil pada kepekatan tinggi (40 mg·mL−1). Dalam ujian ini, kedua-dua kumpulan mempunyai tahap SODA yang cemerlang.26,39 Oleh itu, boleh dinilai bahawa kedua-dua SCE dan SCEF mempunyai kebolehan antioksidan yang tinggi, berasal dari semula jadi.
Pengukuran Aktiviti Perencatan Tirosinase
Mekanisme aktiviti perencatan tyrosinase sangat penting dalam industri kosmetik dan boleh digunakan sebagai ukuran kesan pemutihan kulit.40 Dalam kumpulan SCE, aktiviti perencatan tyrosinase meningkat daripada 35 peratus kepada 36 peratus, 37 peratus, 38 peratus, dan 39 peratus apabila kepekatan ekstrak meningkat (Jadual 7). Dalam kumpulan EM SCEF, aktiviti perencatan tyrosinase meningkat daripada 38 peratus kepada 39 peratus, 40 peratus, 41 peratus, dan 42 peratus apabila kepekatan meningkat. EM SCEF mempunyai aktiviti perencatan tyrosinase yang lebih berkesan daripada ekstrak biasa, tetapi tidak terdapat banyak perbezaan. Walau bagaimanapun, adalah dianggap bahawa kedua-dua ekstrak mempunyai kesan pemutihan kulit apabila ia digunakan untuk membuat kosmetik.41


Penilaian Keselamatan
Formula kosmetik dengan kepekatan SCE dan EM SCEF yang berbeza, iaitu, {{0}}.0, 1.0, 5.0, 1{{ 25}}, 20 dan 40 mg·mL−1, ditunjukkan dalam Rajah 2. Kosmetik yang dihasilkan telah dibentuk dalam bentuk dos W/O dengan menambahkan fasa akueus kepada fasa minyak . Nilai pH permukaan kulit manusia secara amnya adalah antara 4.5 dan 6.5, iaitu sama ada sedikit berasid atau neutral.42 Jika pH menjadi beralkali, daya tahan kulit akan menjadi lemah, membawa kepada pembiakan kuman dan akhirnya kepada penyakit kulit. Oleh itu, sangat disyorkan untuk menggunakan produk kosmetik neutral atau sedikit berasid. Perubahan nilai pH dengan masa penyimpanan ditunjukkan dalam Rajah 3. Menggunakan krim tanpa SCE, pH meningkat sedikit kepada 6.23 selepas 60 hari berbanding nilai awalnya 6.25. Produk krim dengan kepekatan SCE 1.0, 5.0, 10, 20, dan 40 mg·mL−1 masing-masing mempunyai nilai pH awal 5.53, 3.87, 3.43, 3.15 dan 3.03. Nilai pH ini tidak berubah selepas 60 hari. Krim berasaskan EM SCEF dengan kepekatan EM SCEF 1.0, 5.0, 10, 20, dan 40 mg·mL−1 masing-masing mempunyai nilai pH awal 4.12, 3.46, 3.37, 3.15 dan 2.98. Nilai pH yang sama diperhatikan selepas 60 hari. Keputusan ini bermakna tiada perbezaan ketara dalam perubahan pH dalam mana-mana kumpulan dan apabila kepekatan ekstrak meningkat, nilai pH menurun. Keputusan ini membayangkan bahawa tiada masalah keselamatan dalam menggunakan produk kosmetik ini.
Kesan Suhu terhadap Kestabilan Kosmetik


Kesimpulan

Pengakuan
Pendedahan
Rujukan
1. Choi BR, Kim HK, Park JK. Kesan ekstrak buah Schisandra chinensis dan domain A pada pengecutan otot licin korpus kavernosum zakar: mekanisme berpotensi melalui laluan nitrik oksida - kitaran guanosin monofosfat. Amalan Nutr Res. 2018;12 (4):291–297. doi:10.4162/nrp.2018.12.4.291
2. He JL, Zhou ZW, Yin JJ, He CQ, Zhou SF, Yu Y. Schisandra chinensis mengawal enzim metabolisme dadah dan pengangkut dadah melalui pengaktifan Nrf2-laluan isyarat pengantara. Dadah Des Devel Ther. 2015;9:127–146.
3. Nowak A, Szyda MZ, Błasiak J, Nowak A, Zhang Z, Zhang B. Potensi Schisandra chinensis (Turcz.) Baill. Dalam kesihatan manusia dan pemakanan: kajian semula pengetahuan semasa dan perspektif terapeutik. Nutrien. 2019;11(2):333. doi:10.3390/nu1102 0333
4. Ramanathan L, Das NP. Kajian tentang kawalan pengoksidaan lipid dalam ikan tanah oleh beberapa produk semulajadi polifenol. J Agric Food Chem. 1992;40(1):17–21. doi:10.1021/jf00013a004
5. Yang S, Yuan C. Schisandra chinensis: kajian menyeluruh mengenai fitokimia dan aktiviti biologinya. Arab J Chem. 2021;14 (9):103310. doi:10.1016/j.arabjc.2021.103310
6. Cho EG, Cho HI, Choi YJ. Aktiviti antioksidan dan antibakteria, dan kesan perencatan tyrosinase dan elastase minuman Omija (Schizandra chinensis Baillon.) yang ditapai. J Appl Biol Chem. 2010;53(4):212–221. doi:10.3839/jabc.2010.038
7. Park SJ, Seong DH, Park DS, et al. Komposisi kimia Codonopsis lanceolata yang ditapai. J Korean Soc Food Sci Nutr. 2009;38(3):396–400. doi:10.3746/jkfn.2009.38.3.396
8. Dimidi E, Cox SR, Rossi M, Whelan K. Makanan yang ditapai: definisi dan ciri, kesan ke atas Mikrobiota Gut dan kesan ke atas kesihatan dan penyakit gastrousus. Nutrien. 2019;11(8):1806. doi:10.3390/nu11081806
9. Moon SH, Chang HC. Penapaian dedak padi menggunakan Lactiplantibacillus plantarum EM sebagai pemula dan potensi dedak padi yang ditapai sebagai makanan berfungsi. Makanan. 2021;10(5):978. doi:10.3390/makanan10050978
10. Katina K, Liukkonen KH, Kaukovirta A, Adlercreutz H, Heinonen SM, Lampi AM. Perubahan yang disebabkan oleh penapaian dalam nilai pemakanan rai bercambah. J Bijirin Sci. 2007;46 (3):348–355. doi:10.1016/j.jcs.2007.07.006
11. Foolad N, Brezinski EA, Chase EP, Armstrong AW. Kesan suplemen nutrien pada dermatitis atopik pada kanak-kanak. Arch Dermatol. 2012;17:E1–E6.
12. Olle M, Williams IH. Mikroorganisma yang berkesan dan pengaruhnya terhadap pengeluaran sayur-sayuran – kajian semula. J Hortic Sci Biotechnol. 2031;88 (4):380–386. doi:10.1080/14620316.2013.11512979
13. Uma MN, Abirami R. Kajian semula tentang mikroorganisma yang berkesan dan aplikasinya. AJMR. 2019;8(4):121–129. doi:10.5958/2278-4853.20 19.00142.3
14. Bzdyk RM, Olchowik J, Studnicki M, et al. Kesan Mikroorganisma Berkesan (EM) dan baja organik dan mineral terhadap pertumbuhan dan penjajahan mikoriza anak benih Fagus sylvatica dan Quercus robur dalam eksperimen semaian berakar kosong. Hutan. 2018;9(10):597. doi:10.3390/f9100597
15. Chui CH, Cheng GYM. Potensi perencatan pertumbuhan ekstrak penapaian mikroorganisma berkesan (EM-X) pada sel kanser. Int J Mol Med. 2004;14:925–929.
16. Chui CH, Hau DKP. Potensi apoptosis ekstrak penapaian mikroorganisma berkesan tertumpu pada sel kanser manusia. Int J Mol Med. 2006;17:279–284.
17. Tekan saya. Menjalankan ujian makmal mengikut spesifikasi dan kaedah ujian kod makanan. Makanan & Pentadbiran; 2003:887–892.
18. Latimer GW. Kaedah Rasmi Analisis AOAC International. ed ke-21 Kulit keras; 2019
19. Kim JH. Kajian tentang aktiviti biologi ekstrak membranaceous Astragalus. Biomed Sci Lett. 2012;18(1):35–41.
20. Blois MS. Penentuan antioksidan dengan menggunakan radikal bebas yang stabil. alam semula jadi. 1958;26(4617):1199–1200. doi:10.1038/1811199a0
21. Ahn YH, Yoo JS, Kim SH. Ujian kapasiti antioksidan menggunakan pelet DPPH berasaskan alkohol polivinil. Lembu Korea Chem Soc. 2010;31(9):2557–2560. doi:10.5012/bkcs.2010.31.9.2557
22. Kim BJ, Park YK, Kang BS. Kesan Rubifructus pada ovoluationandovaryinrats. Herba J Korea. 2001;16:139–152.
23. Grey JI, Dugan JRL. Perencatan pembentukan N-nitrosamine dalam sistem makanan model. J Food Sci. 1975;40(5):981–985. doi:10.1111/j.1365- 2621.1975.tb02248.x
24. Marklund S, Marklund G. Penglibatan superoksida radikal amino dalam pengoksidaan pyrogallol dan ujian mudah untuk superoksida dismutase. Eur J Biochem. 1975;47:468–474.
25. Masamoto YH, Ando Y, Murata Y, Shiraishi M, Tada K, Takahata K. Aktiviti perencatan tyrosinase cendawan Esculetin yang diasingkan daripada benih Euphorbia lathyris L. Biosci Biotechnol Biochem. 2003;67(3):631–634. doi:10.1271/bbb.67.631
26. Kwon HJ, Park CS. Aktiviti biologi ekstrak dari Omija. Pengawet Makanan J Korea. 2008;15:587–592.
27. Shin HO. Kajian tentang kesan fisiologi polifenol yang telah dimurnikan dan perkembangan pengemulsi berganda. Gyeongbuk, Korea: Sekolah Siswazah Jabatan Sains Kosmeseutikal, Universiti Daegu Haany; 2009.
28. Markris DP, Rossiter JT. Perbandingan quercetin dan flavonol hidroksi bukan orto sebagai antioksidan dengan bersaing dalam tindak balas pengoksidaan in vitro. J Agric Food Chem. 2001;49(7):3370–3377. doi:10.1021/jf010107l
29. An BJ, Park TS, Lee JY, et al. Kesan anti-mikrob dari penambahan polifenol teh hijau yang disinari ke dalam komposisi kosmetik. J Korean Soc Appl Biol Chem. 2007;50:210–216.
30. Hong JY, Nam HS, Yoon KY, Shin SR. Aktiviti antioksidan ekstrak daripada jujube hitam yang ditapai. Pengawet Makanan J Korea. 2012;19(6):901–908. doi:10.11002/kjfp.2012.19.6.901
31. Youn JS, Shin SY, Wu Y, et al. Kesan antioksidan dan anti-kedutan Aruncus dioicus var. ekstrak kamtschaticus. Pengawet Makanan J Korea. 2012;19(3):393–399. doi:10.11002/kjfp.2012.19.3.393
32. Chan YY, Kim KH, Cheah SH. Kesan perencatan Sargassum polycystin pada aktiviti tyrosinase dan pembentukan melanin dalam sel melanoma murine B16F10. J Ethnopharmacol. 2011;137(3):1183–1188. doi:10.1016/j.jep.2011.07.050
33. Huang HC, Hsieh WT, Niu YL, Chang TM. Perencatan melanogenesis dan sifat antioksidan ekstrak bunga Magnolia grandiflora L.. BMC Complement Altern Med. 2012;6:12–72.
34. Jang MJM, Woo H, Kim YH, Jun DY, Rhee WJ. Kesan antioksidatif, aktiviti penghapusan radikal DPPH dan anti-trombogenik oleh ekstrak Sancho (Zanthoxylum schinifolium). Korea J Nutr 2005;38:386–394.
35. Fiddler W, Piotrowski EG, Pensabean JW, Doerr RC, Wassermann AE. Kesan kepekatan natrium nitrit pada pembentukan N-nitroso dimethylamine dalam frankfurters. J Food Sci. 1972;37(5):668–673. doi:10.1111/j.1365-2621.1972.tb02721.x
36. Lee SJ, Chung MJ, Shin JH, Sung NJ. Kesan komponen tumbuhan semula jadi ke atas penghapusan nitrit. J Food Hyg Keselamatan. 2000;15 (2):88–94.
37. Kang BR, Perubahan aktiviti seperti SOD dan kebolehan mengais nitrit melalui percambahan dalam beras perang Tesis Sarjana Teknologi Universiti Kebangsaan Seoul (2003).
38. Yang YW, Hsu PYJ. Kesan mikrozarah Poli (D, L-Lactide-Co-Glycolide) dengan permukaan berbilang lapisan terpasang sendiri polielektrolit pada pembentangan silang antigen eksogen. Bahan bio. 2008;29(16):2516. doi:10.1016/j.biomaterials.2008.02.015
39. Serrano MC, Pagani R, Manzano M, Comas JV, Portoles MT. Potensi membran mitokondria dan kandungan spesies oksigen reaktif endothelial dan sel otot licin yang dikultur pada filem poli (epsilon-kaprolakton). Bahan bio. 2006;27(27):4706. doi:10.1016/j.biomaterials.2006.05.007
40. Pawelek JM. Selepas dopachrome. Sel Pigm Res. 1991;4(2):53–62. doi:10.1111/j.1600-0749.1991.tb00315.x
41. Invergar R, McEvily AJ. Kajian mengenai aktiviti biologi daripada ekstrak Crataegi Fructus. Korea J Herbol. 1992;17(1):29–38.
42. Wilkinson JB, Moore RJ. Kosmetologi Harry. New York: Chemical Publishing Co., Inc; 1982:749.
Untuk maklumat lanjut: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501






