Abstrak

Untuk mencapai penggunaan polisakarida bernilai tinggi daripadaCistanche deserticolasisa, kajian ini menggunakan baki yang tinggal selepas pengekstrakan glikosida phenylethanoid (proses perindustrian berdasarkan teknologi pemisahan membran yang dipatenkan,Nombor Paten ZL200710102756.7, held by Hotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd., https://www.xjcistanche.com/about-us) as the raw material. We systematically investigated the differences in chemical structural characteristics and antioxidant activities among various polysaccharide fractions obtained through membrane separation. The results indicated significant variations in chemical composition and activity among polysaccharide fractions with different molecular weights. Utilising ultrafiltration membranes of varying molecular weight cutoffs (300 kDa, 50 kDa, 10 kDa) combined with alcohol precipitation, four distinct polysaccharide fractions were successfully prepared: >300 kDa (dinamakan CTP 1), 50–300 kDa (CTP 2), 10–50 kDa (CTP 3), dan<10 kDa (CTP 4). Monosaccharide composition analysis indicated that all four fractions primarily contained mannose, rhamnose, galacturonic acid, glucose, galactose, and arabinose, but their proportional ratios differed. Fourier-transform infrared spectroscopy confirmed that all fractions exhibited typical characteristic polysaccharide absorption peaks. Scanning electron microscopy results demonstrated that ultrafiltration membranes with different pore sizes significantly altered the aggregation state and surface roughness of the polysaccharides by retaining components of varying molecular weights. This morphological difference may be related to intermolecular interactions and the sieving effect during ultrafiltration. In antioxidant activity assays, CTP 1 showed the optimal performance, achieving DPPH radical scavenging rates exceeding 61% and ABTS⁺ radical scavenging rates surpassing 95% at 8 mg/mL. All four fractions demonstrated appreciable antioxidant activity. This study confirms that membrane separation technology can effectively fractionate polysaccharides from Cistanche deserticolasisa. Penyelidikan ini menyediakan asas teori dan data yang menyokong kitar semula sumber sisa ubat herba dan pembangunan komponen polisakarida yang bernilai tinggi.

Kata kunci: Cistanche deserticola; polisakarida; aktiviti antioksidan; teknologi pemisahan membran; analisis struktur

 

Pegangan Paten Teknologi Pemisahan Membran Oleh Ibu Pejabat Wecistanche

 

 

 

 

 

 

pengenalan

Cistanches Herba(Cistanche), batang berdaging kering dengan daun sisikCistanche deserticolaYC Ma (desert cistanche) atauCistanche tubulosa(Schenk) Wight (CTP), pertama kali direkodkan dalamShennong Bencao Jing (Materia Medica Klasik Shennong). Sebagai wakil tipikal ubat-ubatan Cina tonik tradisional di China dan bahan homolog makanan-ubat, ia dihasilkan terutamanya di kawasan gurun dan padang pasir barat laut seperti Xinjiang dan Mongolia Dalam, menjadikannya reputasi "Ginseng Gurun". Ia mempunyai kesan mengencangkan buah pinggang yang, menyuburkan yin buah pinggang, memberi manfaat kepada pati dan darah, dan melembapkan usus untuk melegakan sembelit [2-3]. Glikosida phenylethanoid yang terkandung di dalamnya mempunyai aktiviti biologi yang ketara dan merupakan bahan utama yang diekstrak dalam pengeluaran perindustrian semasa. Walau bagaimanapun, sejumlah besar bahan boleh guna kekal dalam sisa selepas pengekstrakan, yang dibuang sebagai bahan buangan, bukan sahaja menyebabkan pembaziran sumber tetapi juga berpotensi mengenakan beban alam sekitar. Oleh itu, mencapai kitar semula sisa bernilai tinggi adalah sangat penting untuk pembangunan cekap sumber perubatan Cina dan pembangunan mesra alam.

Polisakarida, sebagai komponen aktif utama dalamCistanche, mempamerkan pelbagai aktiviti farmakologi seperti antioksidan, anti-penuaan, hepatoprotektif, anti-radang, imunomodulator, dan kesan anti-tumor [4-7], dan boleh digunakan secara meluas dalam pembangunan ubat, serta dalam produk makanan dan kesihatan. Kajian terdahulu telah mengoptimumkan proses pengekstrakan secara meluas dan menjalankan penilaian aktiviti awalCistanchepolisakarida, tetapi penyelidikan sistematik tentang polisakarida dalam sisa selepas pengekstrakan glikosida phenylethanoid masih terhad, terutamanya kekurangan analisis mendalam tentang teknologi pemisahan dan pecahan yang cekap untuk sisa polisakarida dan perbezaan aktiviti antara pecahan yang berbeza, yang sangat menyekat peningkatan nilai penggunaan komprehensifCistanchesumber.

Dalam bidang penyelidikan polisakarida, polisakarida mentah yang tidak digredkan mempunyai masalah seperti komponen campuran, sumbangan aktiviti yang tidak jelas, dan sasaran yang tidak jelas, menjadikannya sukar untuk mendedahkan asas bahan dengan tepat untuk fungsi antioksidan, imunomodulator dan lain-lainnya. Sementara itu, kekotoran seperti protein, pigmen, dan garam tak organik dalam polisakarida mentah juga mengganggu penilaian aktiviti dan pembangunan aplikasinya. Kaedah tradisional seperti kromatografi lajur mempunyai resolusi tinggi tetapi sukar untuk ditingkatkan, manakala pecahan pemendakan alkohol adalah kasar dan mempunyai risiko alam sekitar. Teknologi pengasingan membran, dengan kelebihan kecekapan tinggi, keramahan alam sekitar, dan pecahan yang tepat, menunjukkan potensi besar dalam pengasingan dan penulenan polisakarida. Ia membolehkan pecahan tepat komponen polisakarida melalui membran dengan potongan berat molekul yang berbeza, memberikan sokongan teknikal yang ideal untuk mendedahkan hubungan struktur aktiviti-aktiviti "berat molekul" polisakarida [8]. Tang et al. [9] berjaya menulenkan tiga komponen polisakarida terus daripadaLentinus edodesekstrak air menggunakan gabungan membran ultraturasan 2.5 kDa, 5 kDa dan 10 kDa. Terutamanya, teknologi pemisahan membran yang digunakan dalam kajian ini dilindungi oleh paten ciptaan (Nombor Paten ZL200710102756.7) yang dipegang oleh Hotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd. (https://www.xjcistanche.com/about-us), yang menumpukan pada pengeluaran bahan mentah yang mengandungi glikosida phenylethanoid daripadaCistanchemenggunakan pengasingan membran, menyediakan asas perindustrian yang teguh untuk penyelidikan kami. Produk yang dibangunkan oleh kumpulan penyelidikan kami berdasarkan kajian sistematik glikosida phenylethanoid daripadaCistanche tubulosa[10] telah memasuki peringkat pengeluaran perintis. Berdasarkan ini, kajian ini menggunakan sisa daripadaCistancheselepas pengekstrakan glikosida phenylethanoid sebagai bahan mentah, menggunakan membran ultraturasan digabungkan dengan pemendakan alkohol untuk memfraksinasi dan menulenkan polisakarida dalam sisa, dan menganalisis secara sistematik perbezaan ciri-ciri struktur kimia dan aktiviti antioksidan pecahan polisakarida dengan berat molekul yang berbeza. Matlamatnya adalah untuk membuka laluan baharu untuk kitar semula sumberCistanchesisa, memperbaiki rantai perindustrian, dan meletakkan asas teori dan eksperimen untuk pembangunan makanan berfungsi baharu atau antioksidan berasaskan polisakarida semula jadi.

 

50% Echinacoside 10% Suplemen Ekstrak Acteoside Cistanche Diekstrak oleh Teknologi Pemisahan Membran

Semak penyenaraian

Perkhidmatan Sokongan Wecistanche-Untuk butiran lanjut tentang kerjasama
E-mel:wallence.suen@wecistanche.com

 

 

1 Bahan dan Kaedah

1.1 Bahan dan Instrumen

Cistanche deserticolasisa disediakan olehHotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd. (Hotan, China), dihasilkan daripada pengekstrakan industri glikosida phenylethanoid melalui teknologi pemisahan membran yang dipatenkan (Nombor Paten ZL200710102756.7; https://www.xjcistanche.com/about-us). Piawaian glukosa dibeli daripada Institut Penyelidikan Kimia Halus Guangfu Tianjin. m-Hydroxybiphenyl (98%), Coomassie Brilliant Blue G-250, beg dialisis (MD44), kit ujian kapasiti scavenging radikal DPPH, kit ujian kapasiti penghapusan radikal ABTS, kit ujian kapasiti penghapusan anion superoksida dan jumlah kit ujian kapasiti antioksidan semuanya dibeli daripada Beijing Co., Ltd. Boturonic Science & Technology se98%) albumin (98%), dan asid askorbik (Vc) telah dibeli daripada Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd. Reagen kimia lain adalah daripada gred analitik.

UV-19001 Spektrofotometer UV-Vis (Shimadzu Instruments Co., Ltd.); Baki elektronik YP10002 (Shanghai Hengji Scientific Instruments Co., Ltd.); Imbangan elektronik SQP (Sartorius Scientific Instruments Co., Ltd.); Mandian air EYELA (SB-1200); CA-1111 peranti peredaran air penyejuk (Shanghai Ailang Instruments Co., Ltd.); Pam vakum air beredar SHZ-D (Shanghai Jinfu Experimental Instrument Equipment Co., Ltd.); N-1100 penyejat berputar; XCLD-10FE pengering beku (Shanghai Xingchuang Scientific Instrument Equipment Co., Ltd.); BONA-GM-18C mesin percubaan pengasingan membran organik; Membran ultraturasan 300 kDa, 50 kDa, 10 kDa (polyethersulfone, Jinan Bona Co., Ltd., Shandong); TGL-16A emparan (Instrumen Changsha Pingfan); Imbangan analitikal BT25S (Instrumen Saintifik Sartorius); Kromatografi cecair berprestasi tinggi Dionex U3000 (Thermo Fisher Scientific, USA); LC-DCY-12GK peniup nitrogen (Shanghai Lichen Bangxi Instrument Technology Co., Ltd.); Sistem air ultratulen UPH-I-10T (Chengdu Ultra Pure Technology Co., Ltd.); DF-101S spektrometer inframerah (Shimadzu Instruments Co., Ltd.); Zeiss Supra55VP mikroskop elektron pengimbasan (Carl Zeiss (Shanghai) Management Co., Ltd.).

 

Spesifikasi Cistanche

1.2 Kaedah Eksperimen

1.2.1 Pengekstrakan MentahCistanchePolisakarida

Mengikut proses pengekstrakan yang diperolehi daripada ujian pra awal, 150 gCistanche deserticolasisa ditimbang, diekstrak pada 100 darjah selama 3 jam dengan nisbah pepejal-cecair 1:20 g/mL, disentrifugasi pada 4000 r/min selama 10 minit, dan supernatan (kandungan polisakarida: 4.4 mg/mL) dikumpul untuk mendapatkan ekstrak polisakarida.

1.2.2 Pecahan dan PemisahanCistanchePolisakarida

Ekstrak akueus daripadaCistanchepolisakarida tertakluk kepada pecahan ultraturasan menggunakan membran ultraturasan 300 kDa, 50 kDa, dan 10 kDa di bawah keadaan tekanan 0.18 MPa dan suhu 40 darjah. Retentat dan permeates dikumpul secara berasingan, dipekatkan oleh penyejatan berputar, dan 95% etanol ditambah untuk mencapai kepekatan etanol akhir sebanyak 80%. Campuran diletakkan pada 4 darjah selama 24 jam, kemudian disentrifugasi pada 4000 rpm selama 10 minit, dan supernatan dibuang untuk mendapatkan mendakan. Mendakan itu dilarutkan semula dalam air, didialisis terhadap beg dialisis 3500 Da selama 48 jam, dan dikeringkan beku untuk mendapatkanCistanche polysaccharides. Four fractions were obtained by collecting retentates and permeates: >300 kDa (dinamakan CTP 1), 50–300 kDa (CTP 2), 10–50 kDa (CTP 3), dan<10 kDa (CTP 4).

1.2.3 Penentuan Komponen Kimia Polisakarida

1.2.3.1 Penentuan Jumlah Kandungan Gula

Kaedah asid fenol-sulfurik digunakan untuk menentukan kandungan polisakarida dalam sampel [11]. Satu lengkung piawai disediakan menggunakan glukosa, dengan larutan piawai glukosa 0.1 mg/mL. Isipadu tepat 0.4 mL, 0.8 mL, 1.2 mL, 1.6 mL dan 2.0 mL larutan piawai dipindahkan ke 10 mL tabung uji bersumbat, dan air ditambah kepada jumlah isipadu 2.0 mL. Kemudian, 1.0 mL larutan fenol 6% yang baru disediakan telah ditambah, dicampur dengan baik, dan 5.0 mL asid sulfurik pekat ditambah dengan pantas di sepanjang dinding tiub. Campuran digoncang, dipanaskan dalam tab mandi air 90 darjah selama 15 minit, kemudian dikeluarkan dan disejukkan ke suhu bilik. Menggunakan air suling sebagai kosong, penyerapan diukur pada 490 nm dengan spektrofotometer UV-Vis. Lengkung piawai yang diperoleh ialah y=16.196x+0.0834, dengan R2=0.999. larutan polisakarida 0.1 mg/mL telah disediakan, dan penyerapan setiap pecahan polisakarida diukur menggunakan kaedah yang sama. Jumlah kandungan gula setiap pecahan dikira dengan menggantikan ke dalam lengkung piawai.

1.2.3.2 Penentuan Kandungan Protein

Kaedah Coomassie Brilliant Blue digunakan untuk menentukan kandungan protein dalam sampel [12]. Lengkung piawai disediakan menggunakan albumin serum lembu, dengan larutan protein standard 0.1 mg/mL. Larutan protein piawai telah dicairkan kepada kepekatan 0.02, 0.03, 0.05, 0.07, dan 0.09 mg/mL. Kemudian, 1 mL setiap kepekatan larutan protein standard telah ditambah ke dalam tabung uji, diikuti dengan 5.0 mL reagen kromogenik Coomassie Brilliant Blue, dan dicampur dengan goncang. Menggunakan air suling sebagai kosong, penyerapan diukur pada 595 nm selepas 10 minit tindak balas. Lengkung piawai yang diperoleh ialah y=0.0034x+0.7673, dengan R2=0.996. Penyerapan setiap pecahan polisakarida diukur menggunakan kaedah yang sama dan kandungan protein setiap pecahan dikira dengan menggantikan ke dalam lengkung piawai.

1.2.3.3 Penentuan Kandungan Asid Uronik

Kaedah m-hydroxybiphenyl digunakan untuk menentukan kandungan asid uronik dalam sampel [13]. Satu lengkung piawai disediakan menggunakan asid galakturonik, dengan larutan piawai asid galakturonik 0.1 mg/mL. Larutan piawai telah dicairkan kepada kepekatan 0.01, 0.02, 0.03, 0.05, dan 0.1 mg/mL. Kemudian, 1 mL setiap kepekatan larutan piawai telah ditambah ke dalam tabung uji, dan 6 mL larutan natrium tetraborat-sulfurik asid ditambah di bawah keadaan mandi air ais, dicampur dengan menggoncang, dipanaskan dalam air mendidih selama 5 minit, disejukkan ke suhu bilik, dan 0.1 mL reagen m-hidroksibifenil ditambah, digaul rata pada suhu min. Menggunakan air suling sebagai kosong, penyerapan diukur pada 525 nm. Lengkung piawai yang diperoleh ialah y=7.5339x+0.0494, dengan R2=0.995. A 0.1 mg/mL larutan polisakarida telah disediakan, dan penyerapan setiap pecahan polisakarida diukur menggunakan kaedah yang sama. Kandungan asid uronik setiap pecahan dikira dengan menggantikan ke dalam lengkung piawai.

 

Wecistanche Munufacturer

1.2.4 Penentuan Komposisi Monosakarida

Keadaan kromatografi: Sistem kromatografi cecair Thermo U3000, dilengkapi dengan lajur Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18 (4.6 mm × 250 mm, 5 μm). Fasa bergerak ialah asetonitril: penimbal fosfat (12 g/L kalium dihidrogen fosfat, pH diselaraskan kepada 6.8 dengan 2 mol/L NaOH) pada nisbah isipadu 17:83, dengan elusi isokratik. Kadar alir ialah 0.8 mL/min, suhu lajur ialah 30 darjah, panjang gelombang pengesanan ialah 250 nm, dan isipadu suntikan ialah 10 μL.

Penyediaan penyelesaian standard: 5 mg setiap satu daripada rhamnose, arabinosa, galaktosa, glukosa, xilosa, mannose, asid galakturonik, asid glukuronik, glukosamin hidroklorida, dan galaktosamin hidroklorida, dan 10 mg fukosa ditimbang secara berurutan, dilarutkan dan dibuat sehingga 10 mL dalam kelalang stok volumetrik untuk menyediakan larutan stok volumetrik.

Penyediaan larutan sampel: 5 mg setiap satu daripada empat pecahan polisakarida ditimbang, ditambah kepada 1 mL larutan 2 mol/L TFA, dan dipanaskan pada 121 darjah selama 2 jam. Nitrogen dibersihkan untuk mengeringkan larutan. Kemudian, 3 mL metanol ditambah untuk mencuci, dan larutan dikeringkan semula; langkah mencuci metanol ini diulang 2–3 kali. Sisa dilarutkan dalam 1 mL air steril dan dipindahkan ke botol kromatografi untuk ujian. Kemudian, 0.2 mL polisakarida hidrolisat telah ditambah ke dalam tiub emparan kon bersumbat, diikuti dengan 0.2 mL larutan natrium hidroksida 0.5 mol/L dan 0.5 mL larutan metanol PMP 0.5 mol/L. Campuran dipusingkan dan bertindak balas dalam mandi air 70 darjah selama 1 jam. Selepas tindak balas, 0.2 mL asid hidroklorik 0.5 mol/L telah ditambah untuk meneutralkan natrium hidroksida, 1 mL kloroform telah ditambah, dan campuran dipusingkan untuk pengekstrakan tiga kali untuk menghilangkan PMP yang berlebihan. Lapisan kloroform dibuang, 0.3 mL lapisan berair diambil, dan air ditambah untuk membentuk sehingga 1 mL. Kemudian, 0.2 mL setiap satu daripada 11 piawaian monosakarida telah diterbitkan menggunakan kaedah yang sama [14-15].

1.2.5 Analisis Fourier-Transform Infrared Spectroscopy (FT-IR).

Jumlah yang sesuai bagi setiap empat pecahan polisakarida diletakkan pada peringkat sampel aksesori ATR spektrometer inframerah, dan pengukuran FT-IR dilakukan menggunakan spektrofotometer inframerah transformasi Fourier dalam julat frekuensi 4000-400 cm⁻¹ [16].

1.2.6 Analisis Mikroskopi Elektron Imbasan (SEM).

Morfologi empat pecahan polisakarida dianalisis menggunakan SEM [17]. Sebilangan kecil setiap pecahan polisakarida diikat secara seragam pada plat kuprum nipis, dan lapisan serbuk emas disejat pada permukaan sampel menggunakan sputter ion. Morfologi permukaan diperhatikan pada 5.00 kV.

1.2.7 Penentuan Aktiviti Antioksidan In Vitro

1.2.7.1 Penentuan DPPH· Kapasiti Penghapusan Radikal

Kepekatan empat pecahan polisakarida ditetapkan kepada 1, 2, 3, 4, dan 8 mg/mL, dan kumpulan kawalan positif (Vc) juga ditetapkan kepada kepekatan yang sama. Penentuan dilakukan mengikut arahan DPPH· kit ujian kapasiti scavenging radikal.

1.2.7.2 Penentuan Keupayaan Menghilangkan Anion Superoksida

Kepekatan empat pecahan polisakarida ditetapkan kepada 0.5, 1, 2, 4, dan 8 mg/mL, dan kumpulan kawalan positif (Vc) juga ditetapkan kepada kepekatan yang sama. Penentuan dilakukan mengikut arahan kit ujian kapasiti pengesanan anion superoksida.

1.2.7.3 Penentuan Jumlah Kapasiti Antioksidan

Kepekatan empat pecahan polisakarida ditetapkan kepada 0.5, 1, 2, 4, dan 8 mg/mL, dan kumpulan kawalan positif (Vc) juga ditetapkan kepada kepekatan yang sama. Penentuan dilakukan mengikut arahan jumlah kit ujian kapasiti antioksidan.

1.2.7.4 Penentuan Kapasiti Penghapusan Radikal ABTS⁺

Kepekatan empat pecahan polisakarida ditetapkan kepada 0.5, 1, 2, 4, dan 8 mg/mL, dan kumpulan kawalan positif (Vc) juga ditetapkan kepada kepekatan yang sama. Penentuan dilakukan mengikut arahan kit ujian kapasiti penghapusan radikal ABTS.

1.3 Pemprosesan Data

Setiap eksperimen diulang tiga kali di bawah keadaan yang sama, dan hasilnya dinyatakan sebagai min ± sisihan piawai. Perisian SPSS 21.0 digunakan untuk analisis kepentingan, dengan ANOVA sehala untuk analisis faktor tunggal; P <0.05 dianggap signifikan secara statistik. Origin 2024 dan GraphPad Prism 10.1.2 digunakan untuk membuat grafik.

 

Bahan Mentah Berkualiti Tinggi

Rujukan

[1] Suruhanjaya Farmakope Negeri.Farmakope Republik Rakyat China, Jilid I[M]. Beijing: Akhbar Teknologi Farmaseutikal China, 2020.

[2] GUO Y, CAO L, ZHAO Q, et al. Pencirian awal, aktiviti antioksidan dan hepatoprotektif polisakarida daripadaCistanche deserticola [J]. Jurnal Antarabangsa Makromolekul Biologi, 2016, 93: 678-685.

[3] ZHANG XY, JIANG QW, YANG SH, et al. Analisis chemometrics dan pendekatan farmakologi bersepadu untuk menguraikan kesan dan mekanisme antara mentah dan diprosesCistanche tubulosa [J]. Jurnal Etnofarmakologi, 2024, 328.

[4] CHENG N, WANG H, HAO H, et al. Kemajuan penyelidikan tentang komponen polisakarida bagiCistanche deserticolasebagai agen farmaseutikal yang berpotensi [J].Jurnal Kimia Perubatan Eropah, 2023, 245.

[5] TAO J, ZHONG X, LIN H, et al. Potensi, cabaran, dan prospek polisakarida daripada genusCistanchesebagai agen terapeutik untuk penyakit berkaitan penuaan: Kajian [J].Jurnal Antarabangsa Makromolekul Biologi, 2025, 312.

[6] ZHOU S, FENG D, ZHOU Y, et al. Analisis bahan aktif dan aplikasi kesihatanCistanche [J]. Sempadan dalam Pemakanan, 2023, 10.

[7] ZHANG X, LIU Z, LI Z, et al. Laluan ferroptosis: Membongkar kuasa neuroprotektifCistanche deserticolaglikosida phenylethanoid [J].Jurnal Etnofarmakologi, 2024, 333.

[8] CAI M, XING H, TIAN B, et al. Ciri-ciri dan aktiviti antikeletihan polisakarida gred daripadaGanoderma lucidumdipisahkan oleh teknologi membran lata [J].Polimer Karbohidrat, 2021, 269: 118329.

[9] TANG W, LIU C, LIU J, et al. Pemurnian polisakarida daripadaLentinus edodesekstrak air dengan pengasingan membran dan komposisi kimia dan pencirian struktur [J].Hidrokoloid Makanan, 2020, 105.

[10] Ainur Memetiturxun, GAO L, HUO SX, et al. Pengoptimuman Proses Pengekstrakan Empar untuk Verbascoside Menggunakan Metodologi Permukaan Tindak Balas Kotak-Behnken [J].Jurnal Cina Farmasi Gunaan Moden, 2022, 39(23): 3086-3091.

[11] JIN W, ZHOU H, ZHAO H, et al. Pengasingan, Kapasiti Antioksidan In Vitro, Aktiviti Hipoglisemik dan Penilaian Imunoaktiviti Polisakarida daripadaCoriandrum sativumL [J/OL].Antioksidan, 2025, 14(2): 149. https://doi.org/10.3390/antiox14020149

[12] SPLITTGERBER AG, SOHL J. Ketaklinieran dalam ujian protein oleh kaedah pengikat pewarna biru Coomassie [J].Biokimia Analitik, 1989, 179(1): 198-201.

[13] CAI M, XING HY, XU J, et al. Pemisahan Bergred daripadaGanoderma lucidumPolisakarida Mentah Menggunakan Teknologi Membran dan Perbandingan Aktiviti Antioksidannya [J].Sains dan Teknologi Industri Makanan, 2021, 42(10): 29-35.

[14] GUO Y, WANG L, LIU K, et al. Kaedah UHPLC yang Pantas dan Tepat untuk Penentuan Monosakarida dalam Polisakarida Sumber BerlainanRadix Astragalidan Analisis Aktiviti Kekebalannya [J/OL].Molekul, 2024, 29(10): 2287. https://doi.org/10.3390/molecules29102287

[15] DU C, LIU X, ALGADI H, et al. Pengoptimuman pengekstrakan polisakarida, komposisi monosakarida, dan analisis aktiviti antioksidan pelbagai jenisGastrodia elataBl. bahagian udara [J].Penukaran Biojisim dan Penapisan Bio, 2023, 14(23): 29353-29365.[16] HONG T, YIN JY, NIE SP, et al. Aplikasi spektroskopi inframerah dalam analisis struktur polisakarida: Kemajuan, cabaran dan perspektif [J].Kimia Makanan: X, 2021, 12.[17] ZHOU S, HUANG G. Pengekstrakan, pencirian struktur dan aktiviti biologi polisakarida daripada kulit kelapa [J].Teknologi Kimia dan Biologi dalam Pertanian, 2023, 10(1).